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<GmsArticle>
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    <Identifier>dgkh000080</Identifier>
    <ArticleType>Originalarbeit</ArticleType>
    <TitleGroup>
      <Title language="de">Einfluss von Octenidin auf die Phagocytose von &#34;Stapylococcus aureus&#34; durch neutrophile Granulocyten</Title>
      <TitleTranslated language="en">Impact of octenidine on phagocytosis of &#34;Staphylococcus aureus&#34; by neutrophils </TitleTranslated>
    </TitleGroup>
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      <Creator>
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          <Lastname>Steinhauer</Lastname>
          <LastnameHeading>Steinhauer</LastnameHeading>
          <Firstname>Katrin</Firstname>
          <Initials>K</Initials>
          <AcademicTitle>Dr.</AcademicTitle>
        </PersonNames>
        <Address>Sch&#252;lke &#38; Mayr GmbH, Research and Development, 22840 Norderstedt, Deutschland, Tel.: &#43;49 40 52100557 Fax: &#43;49 40 52100577<Affiliation>Sch&#252;lke &#38; Mayr GmbH, Research and Development, Norderstedt, Deutschland</Affiliation></Address>
        <Email>katrin.steinhauer&#64;schuelke-mayr.com</Email>
        <Creatorrole corresponding="yes" presenting="no">author</Creatorrole>
      </Creator>
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        <PersonNames>
          <Lastname>Goroncy-Bermes</Lastname>
          <LastnameHeading>Goroncy-Bermes</LastnameHeading>
          <Firstname>Peter</Firstname>
          <Initials>P</Initials>
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          <Affiliation>Sch&#252;lke &#38; Mayr GmbH, Research and Development, Norderstedt, Deutschland</Affiliation>
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    <PublisherList>
      <Publisher>
        <Corporation>
          <Corporatename>German Medical Science GMS Publishing House</Corporatename>
        </Corporation>
        <Address>D&#252;sseldorf</Address>
      </Publisher>
    </PublisherList>
    <SubjectGroup>
      <SubjectheadingDDB>610</SubjectheadingDDB>
      <Keyword language="de">Octenidindihydrochlorid</Keyword>
      <Keyword language="de">pH-Abh&#228;ngigkeit</Keyword>
      <Keyword language="de">Wirkmechanismus</Keyword>
      <Keyword language="de">Phagocytose</Keyword>
    </SubjectGroup>
    <DatePublishedList>
      <DatePublished>20071228</DatePublished>
    </DatePublishedList>
    <Language>germ</Language>
    <SourceGroup>
      <Journal>
        <ISSN>1863-5245</ISSN>
        <Volume>2</Volume>
        <Issue>2</Issue>
        <JournalTitle>GMS Krankenhaushygiene Interdisziplin&#228;r</JournalTitle>
        <JournalTitleAbbr>GMS Krankenhaushyg Interdiszip</JournalTitleAbbr>
        <IssueTitle>Die infizierte Problemwunde 2007 - The infected problem wound 2007</IssueTitle>
      </Journal>
    </SourceGroup>
    <ArticleNo>47</ArticleNo>
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  <OrigData>
    <Abstract language="de" linked="yes">
      <Pgraph>Bei Gram-positiven Bakterien stellt die Veresterung der Teichons&#228;uren mit D-Alanin und die daraus resultierende &#196;nderung der negativen Nettoladung der Zellwand einen Schutzmechanismus vor dem Angriff kationischer Wirkmolek&#252;le dar.</Pgraph>
      <Pgraph>Unsere Untersuchungen zeigen, dass auch f&#252;r den kationischen Wirkstoff Octenidindihydrochlorid eine Assoziation mit der bakteriellen Zellwand in Abh&#228;ngigkeit von der negativen Nettoladung angenommen werden kann. Untersuchungen der Vitalit&#228;t der Bakterien nach Inkubation mit dem Wirkstoff Octenidindihydrochlorid zeigen aber, dass dieser Mechanismus keinesfalls die Penetration des kationischen Wirkstoffs durch den Mureinsacculus verhindern kann, sondern die Penetration des Wirkstoffs durch die Peptidoglycanschichten zu einer letalen Sch&#228;digung der Bakterienzellen f&#252;hrt. </Pgraph>
      <Pgraph>Weiterhin konnte gezeigt werden, dass die Interaktion von Octenidindihydrochlorid mit der bakteriellen Zellwand zu einer verbesserten Phagocytose von <Mark2>Staphylococcus aureus</Mark2> durch humane neutrophile Granulocyten f&#252;hrt.</Pgraph>
    </Abstract>
    <Abstract language="en" linked="yes">
      <Pgraph>The first barrier for cationic molecules attacking gram-positive microorganisms is the cell wall and its amount of net negative charge. Modification of the cell wall by esterification of teichoic acids provides a very effective mechanism to resist such attacks up to a certain degree.</Pgraph>
      <Pgraph>Our data demonstrates that also for the cationic octenidine dihydrochloride association with the cell wall of gram-positive bacteria is dependent on the negative net charge of the cell wall. However, even though this provides some protection our data proves, that the penetration of the biocide through the peptidoglycan layers cannot be prevented at increasing concentrations as shown by LIVE&#47;DEAD staining, thus resulting in a lethal damage of the bacterial cells.</Pgraph>
      <Pgraph>In addition it could be demonstrated, that interaction of octenidine dihydrochloride with the bacterial cell wall results in a significantly enhanced phagocytosis by neutrophils in human blood.</Pgraph>
    </Abstract>
    <TextBlock linked="yes" name="Einleitung">
      <MainHeadline>Einleitung</MainHeadline>
      <Pgraph>Die Zellwand stellt f&#252;r die bakterielle Zelle einen wichtigen Schutz vor &#228;u&#223;eren Einfl&#252;ssen dar. Neben dem Peptidoglycan (Murein) bilden die polyanionischen Teichons&#228;uren einen wichtigen Bestandteil der Zellwand Gram-positiver Bakterien. Dabei kann unterschieden werden zwischen den Teichons&#228;uren, die kovalent mit dem Peptidoglycan assoziiert vorliegen (&#8222;wall teichoic acid&#8220;, WTA) und den Lipoteichons&#228;uren (&#8222;lipoteichoic acid&#8220;, LTA), die als <TextGroup><PlainText>Macroamphiphile</PlainText></TextGroup> mittels eines Glycolipidankers in der Cytoplasmamembran verankert vorliegen <TextLink reference="1"></TextLink>. </Pgraph>
      <Pgraph>Die negative Nettoladung der Zellwand Gram-positiver Bakterien wird durch die Veresterung der anionischen Teichons&#228;uren mit kationischen D-Alanylresten in einer pH-abh&#228;ngigen Reaktion gesteuert <TextLink reference="2"></TextLink>. Dabei resultiert die bei niedrigem pH (&#60;7) erfolgende Veresterung der Teichons&#228;uren mit D-Alanin in einer niedrigen negativen Nettoladung der bakteriellen Zellwand, wogegen bei h&#246;herem pH (&#62;7) keine Veresterung erfolgt. Weiterhin wird durch die Instabilit&#228;t der Esterbindung bei alkalischem pH die Erh&#246;hung der negativen Nettoladung der bakteriellen Zellwand beg&#252;nstigt (t<Subscript>1&#47;2</Subscript> bei pH 8 und 37&#176;C f&#252;r D-Alanyl-LTA von <Mark2>L. rhamnosus</Mark2> ist 3,9 h) <TextLink reference="3"></TextLink>. Folglich wird auf diese Weise die Assoziation kationischer Substanzen wie antimikrobieller Peptide oder  kationischer Wirkstoffe an die bakterielle Zellwand beeinflusst. So wiesen Peschel et al. <TextLink reference="4"></TextLink> nach, dass in Mutanten von <Mark2>Staphylococcus aureus</Mark2> mit erh&#246;hter Empfindlichkeit gegen&#252;ber kationischen antimikrobiellen Peptiden die kationischen D-Alaninester an den Teichons&#228;uren fehlen. </Pgraph>
      <Pgraph>Unsere Daten zeigen, dass auch die Empfindlichkeit von <Mark2>S. aureus</Mark2> gegen&#252;ber dem kationischen Wirkstoff Octenidindihydrochlorid dieser pH-Abh&#228;ngigkeit unterliegt, wobei Experimente zur Vitalit&#228;t von <Mark2>S. aureus</Mark2> eindeutig zeigen, dass auch bei niedriger negativer Nettoladung der Zellwand der Wirkstoff Octenidindihydrochlorid voll wirksam ist. Des Weiteren wurde die Fragestellung untersucht, ob die Bindung von Octenidindihydrochlorid an die Zellwand von <Mark2>S. aureus</Mark2> deren Phagocytose durch neutrophile Granulozyten beeinflusst.</Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Material und Methoden">
      <MainHeadline>Material und Methoden</MainHeadline>
      <Pgraph>F&#252;r die Untersuchungen wurden <Mark2>Staphylococcus aureus</Mark2> ATCC 6538 sowie die &#916;<Mark2>dlt</Mark2>-Mutante <Mark2>S. aureus</Mark2> AG 1, die in der Veresterung der Teichons&#228;uren defizient ist, und ein isogener Wildtyp <Mark2>S. aureus</Mark2> Sa 133 verwendet <TextLink reference="4"></TextLink>. </Pgraph>
      <Pgraph>Alle St&#228;mme wurden in gepufferter Trypton-Soja-Fl&#252;ssigkultur (TSB) angez&#252;chtet, deren pH entweder auf pH 5 oder pH 8 eingestellt war. Kulturbedingungen waren 18 h bei 36&#177;1&#176;C. <Mark2>S. aureus</Mark2> AG 1 wurde in Gegenwart von 100 &#181;g&#47;ml Spectinomycin kultiviert.</Pgraph>
      <Pgraph>Die quantitativen Suspensionsversuche wurden gem&#228;&#223; DGHM-Standardmethoden  durchgef&#252;hrt <TextLink reference="5"></TextLink>.</Pgraph>
      <Pgraph>Die LIVE&#47;DEAD Experimente erfolgten mit dem BacLight<Superscript>TM</Superscript> Bacterial Viability Kit (Molecular Probes, Eugene, OR, USA) gem&#228;&#223; Herstellerangaben.</Pgraph>
      <Pgraph>F&#252;r die Phagocytose-Experimente wurden je 50 &#181;l mit 0,8 mM Octenidindihydrochlorid- oder mit 0,85&#37; NaCl-L&#246;sung  vorbehandelte Bakterienzellen von <Mark2>S. aureus</Mark2> ATCC 6538 mit 450 &#181;l frischem heparinisierten humanen Vollblut bei 37&#176;C inkubiert. Nach der angegebenen Inkubationszeit wurde von den Proben ein Blutausstrich angelegt. Nach der Trocknung wurden die Blutausstriche nach Pappenheim gef&#228;rbt und mikroskopisch ausgewertet. </Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Ergebnisse">
      <MainHeadline>Ergebnisse</MainHeadline>
      <Pgraph>Die Anzucht Gram-positiver Bakterien f&#252;hrt bei pH &#62;7 bei niedrigen Konzentrationen von Octenidindihydrochlorid (0,16 mM) zu einer gr&#246;&#223;eren Empfindlichkeit gegen&#252;ber diesem kationischen Agenz (Abbildung 1 <ImgLink imgNo="1" imgType="figure"/>). Die Experimente mit der D-Alanyl-Ester defizienten Mutante AG1 von <Mark2>S. aureus</Mark2> zeigen weiterhin, dass der Anteil der D-Alanin-Veresterung der Teichons&#228;uren offensichtlich die Empfindlichkeit Gram-positiver Bakterien gegen&#252;ber diesem kationischen Wirkstoff beeinflusst (Abbildung 2 <ImgLink imgNo="2" imgType="figure"/>). </Pgraph>
      <Pgraph>Die Untersuchung der Vitalit&#228;t der bakteriellen Zellen nach Einwirkung verschiedener Konzentrationen von Octenidindihydrochlorid (0,001&#37;-0,1&#37;) zeigen dagegen, dass trotz niedriger negativer Nettoladung (wt Sa 113) innerhalb einer kurzen Einwirkzeit von 5 min die Vitalit&#228;t der Bakterienzellen erheblich beeintr&#228;chtigt wird (deutliche Zunahme der toten, rot gef&#228;rbten Zellen) (Abbildung 3 <ImgLink imgNo="3" imgType="figure"/>).</Pgraph>
      <Pgraph>Abbildung 4 <ImgLink imgNo="4" imgType="figure"/> zeigt, dass <Mark2>S. aureus</Mark2>-Zellen, die mit Octenidindihydrochlorid (0,8 mM) vorbehandelt wurden, im Gegensatz zu mit NaCl (0,85&#37;) vorbehandelten Bakterienzellen bereits nach 5-min&#252;tiger Inkubation mit humanem Vollblut von den neutrophilen Granulozyten signifikant besser phagocytiert werden.</Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Diskussion">
      <MainHeadline>Diskussion</MainHeadline>
      <Pgraph>Die Ergebnisse zeigen, dass der bereits f&#252;r andere kationische Wirkstoffe (antimikrobielle Peptide, Vancomycin, Glycopeptide) gezeigte Wirkmechanismus der Assoziation mit der Zellwand Gram-positiver Bakterien auch f&#252;r Octenidindihydrochlorid postuliert werden kann (4,6). Dabei spielt die negative Nettoladung der bakteriellen Zellwand infolge der D-Alanyl-Veresterung der Teichons&#228;uren eine entscheidende Rolle. In unseren Experimenten war der wt Sa 113 nach Anzucht bei pH 5 weniger empfindlich gegen&#252;ber Octenidindihydrochlorid als die D-Alanyl-Ester defiziente Mutante AG1. Damit kann die Zellwand und ihre von der Veresterung mit D-Alanin abh&#228;ngige Nettoladung als erster Angriffspunkt des kationischen Wirkstoffs Octenidindihydrochlorid postuliert werden. Die Modifikation der Zellwand durch &#196;nderung der Nettoladung (z. B. in Abh&#228;ngigkeit vom pH-wert des Mediums) stellt damit eine bis zu einem gewissen Grad effiziente Verteidigungsstrategie Gram-positiver Bakterien dar (1). Allerdings zeigen die Untersuchungen der Vitalit&#228;t der bakteriellen Zellen nach Einwirkung verschiedener Konzentrationen von Octenidindihydrochlorid, dass dieser Mechanismus keinesfalls die Penetration des kationischen Wirkstoffs durch den Mureinsacculus verhindern kann. So zeigt die Rotf&#228;rbung der Zellen nach Inkubation mit 0,1&#37; Octenidindihydrochlorid eindeutig die Zerst&#246;rung der Cytoplasmamembran infolge der Octenidinpenetration durch die Peptidoglycanschichten.</Pgraph>
      <Pgraph>Diese Sch&#228;digung der bakteriellen Zellen f&#252;hrt des Weiteren ganz offensichtlich zu einer erh&#246;hten Phagocytose von <Mark2>S. aureus</Mark2> durch neutrophile Granulyocten, wie die Experimente mit humanem Vollblut eindrucksvoll zeigen.</Pgraph>
      <Pgraph>Die Sch&#228;digung der Bakterienzelle durch den kationischen Wirkstoff Octenidindihydrochlorid resultiert damit in einer Verbesserung der Phagocytose von <Mark2>S. aureus</Mark2> durch humane neutrophile Granulocyten und kann somit den Wundheilungsproze&#223; bei Infektionen positiv unterst&#252;tzen.</Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Danksagung">
      <MainHeadline>Danksagung</MainHeadline>
      <Pgraph>Die Autoren danken Andreas Peschel f&#252;r die freundliche &#220;berlassung der St&#228;mme <Mark2>S. aureus</Mark2> AG 1 und Sa 113. </Pgraph>
      <Pgraph>Nadine Harbs, Stina Degenhardt, Daniel Zahn und Thorsten Freytag wird f&#252;r die exzellente technische Unterst&#252;tzung gedankt.</Pgraph>
    </TextBlock>
    <References linked="yes">
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        <RefPage>686-723</RefPage>
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        <RefYear>1980</RefYear>
        <RefJournal>J Bacteriol</RefJournal>
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        <RefBookTitle>Standardmethoden der DGHM zur Pr&#252;fung chemischer Desinfektionsverfahren</RefBookTitle>
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      </Reference>
    </References>
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      <Tables>
        <NoOfTables>0</NoOfTables>
      </Tables>
      <Figures>
        <Figure format="png" height="263" width="540">
          <MediaNo>1</MediaNo>
          <MediaID>1</MediaID>
          <Caption>
            <Pgraph>
              <Mark1>Abbildung 1: Wirksamkeit von Octenidin (0.16 mM (0.01&#37;) gegen </Mark1>
              <Mark1>
                <Mark2>S. aureus</Mark2>
              </Mark1>
              <Mark1> ATCC 6538, Fl&#252;ssigkultur</Mark1>
            </Pgraph>
          </Caption>
        </Figure>
        <Figure format="png" height="302" width="624">
          <MediaNo>2</MediaNo>
          <MediaID>2</MediaID>
          <Caption>
            <Pgraph>
              <Mark1>Abbildung 2: Wirksamkeit von Octenidin (0.16 mM (0.01&#37;)) gegen </Mark1>
              <Mark1>
                <Mark2>S. aureus</Mark2>
              </Mark1>
              <Mark1> AG1, Fl&#252;ssigkultur pH 5</Mark1>
            </Pgraph>
          </Caption>
        </Figure>
        <Figure format="png" height="479" width="733">
          <MediaNo>3</MediaNo>
          <MediaID>3</MediaID>
          <Caption>
            <Pgraph>
              <Mark1>Abbildung 3: Vitalit&#228;t von</Mark1>
              <Mark1>
                <Mark2> S. aureus</Mark2>
              </Mark1>
              <Mark1> Sa 113 nach Inkubation mit Octenidin (0,001&#37;-0,1&#37;, 5 min.), LIVE&#47;DEAD-F&#228;rbung</Mark1>
            </Pgraph>
          </Caption>
        </Figure>
        <Figure format="png" height="256" width="615">
          <MediaNo>4</MediaNo>
          <MediaID>4</MediaID>
          <Caption>
            <Pgraph>
              <Mark1>Abbildung 4: Phagocytose von </Mark1>
              <Mark1>
                <Mark2>S. aureus</Mark2>
              </Mark1>
              <Mark1> durch neutrophile Granulocyten in humanem Vollblut</Mark1>
            </Pgraph>
          </Caption>
        </Figure>
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