dgkh000078 Originalarbeit In vitro efficacy of octenidine and polihexanide against biofilms composed of Pseudomonas aeruginosa Harbs Harbs Nadine N

Schülke & Mayr GmbH, Norderstedt, Deutschland

author Siebert Siebert Jörg J

Forschung & Entwicklung, Schülke & Mayr GmbH, Robert-Koch-Str. 2, 22851 Norderstedt, Deutschland, Tel.: +49 40 521 00 534Schülke & Mayr GmbH, Norderstedt, Deutschland

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Düsseldorf

610 Biofilm Wundspüllösung Ablösung Inaktivierung Octenidindihydrochlorid Polihexanid 20071228 germ 1863-5245 2 2 GMS Krankenhaushygiene Interdisziplinär GMS Krankenhaushyg Interdiszip Die infizierte Problemwunde 2007 - The infected problem wound 2007 45 Die Ablösung und Inaktivierung von Biofilmen durch Wundspüllösungen ohne bzw. mit Zusatz antimikrobieller Stoffe (Octenidindihydrochlorid, Polihexanid) wurde in einem Labormodell mit Pseudomonas aeruginosa untersucht. Hierzu wurden mit P. aeruginosa über 1 Woche bewachsene Objektträger aus Polycarbonat für 60 min den Prüflösungen ausgesetzt und nachfolgend die Ablösung bzw. Inaktivierung des Biofilms mittels Anfärbung mit Kristallviolett bzw. Verdünnungsreihe und Keimzahlbestimmung ermittelt. Im Ergebnis kam es zu keiner Hemmung der Ablösung (Reinigung) durch den Zusatz von Octenidin bzw. Polihexanid. Im Gegensatz zu den reinen Salzlösungen (NaCl, Ringer) wurde durch Zusatz der antimikrobiellen Wirkstoffe eine deutliche Reduktion der Koloniezahl im Biofilm erreicht. The removal and inactivation of biofilms through wound cleansing solutions with and without antimicrobial supplements (octenidine dihydrochloride, polihexanide) have been investigated in a laboratory model with Pseudomonas aeruginosa. Plastic slides of polycarbonate grown over with P. aeruginosa for 1 week were incubated with the cleansing solutions for 60 min. Removal and inactivation of the biofilm were determined by staining with crystal violet and by plating, respectively. No inhibition occurred by supplementing the cleansing solutions with octenidine or polyhexanide. By using octenidine and polihexanide a pronounced decrease in colony numbers of the biofilm was achieved compared to pure salt solutions (NaCl, Ringer). Einleitung Biofilme stellen komplexe Lebensgemeinschaften von Mikroorganismen auf den vielfältigsten unbelebten (z.B. Kathetern, Implantate) und belebten Oberflächen (z.B. Wunden) dar. Die von den Mikroorganismen im Zuge ihres Stoffwechsels ausgeschiedenen extrapolymeren Substanzen (EPS) vermitteln die Anheftung von Mikroorganismen, sorgen für deren Ernährung, geben dem Biofilm seine Form und Eigenschaften und stabilisieren ihn gleichzeitig . Da Biofilme ihren Bewohnern gleichzeitig Schutz vor externen Einflüssen (z.B. dem Angriff von Antibiotika) verleihen sowie das Auftreten und die Persistenz von Infektionen fördern können , muss es das Anliegen sein, Biofilme möglichst schnell und effektiv abzulösen und die darin enthaltenen Mikroorganismen abzutöten. Wundspüllösungen, d.h. mit bzw. ohne antiseptischen Wirkstoff versehene Salzlösungen, werden häufig unterstützend zur Reinigung kontaminierter, kolonisierter und belegter Wunden eingesetzt. Es sollte untersucht werden, inwieweit verschiedene Wundspüllösungen in der Lage sind, unter experimentellen Bedingungen einen standardisierten, artifiziellen Biofilm aus Pseudomonas aeruginosa von einer unbelebten Oberfläche abzulösen und zu inaktivieren. Methoden Für die Anzucht des artifiziellen Biofilms wurden Polycarbonat-Objektträger (76 x 26 x 1 mm, Fa. Buck & Sohn, Hamburg) in einem „Biofilm-Reaktor“ (Abbildung 1 ) über insgesamt 1 Woche mit 1 l einer mit Pseudomonas aeruginosa beimpften Nährlösung bei einer Fließgeschwindigkeit von 3 ml/min im Kreislauf inkubiert. Zur Prüfung der Reinigungsleistung wurden die so mit dem Biofilm bewachsenen Objektträger 60 min in die jeweilige Wundspüllösung eingetaucht. Nach Herausnahme und Trocknung wurden die verbliebenen Biofilmreste auf den Objektträgern in Färbeküvetten für 15 min mit 0,1% Kristallviolett angefärbt. Nach Extraktion des Farbstoffes aus dem angefärbten Biofilm mittels 96% Ethanol wurde 3 min bei 3000 rpm zentrifugiert und der Gehalt im Überstand photometrisch bei 585 nm bestimmt. Im Ergebnis war die Extinktion umso geringer, desto weniger Biofilm auf den Objektträgern nach Behandlung verblieben war. Für die Bestimmung der Inaktivierung wurden die Objektträger nach der einstündigen Inkubation mit der Wundspüllösung in CSL-Bouillon mit Inaktivierungssubstanzen (Tween 80, Lecithin, Saponin, Histidin) überführt und zur Ablösung und Homogenisierung des Biofilms 60 s im Ultraschall behandelt. Aus dieser Lösung erfolgte mittels Verdünnungsreihe, Ausplattieren und Auszählung der Kolonien die Koloniezahlbestimmung. Alle Messungen wurden in 3 Parallelen durchgeführt. Folgende Wundspüllösungen wurden zur Prüfung verwendet: 0,05% Octenidin-Lösung 0,02% Polihexanid-Lösung Ringer-Lösung NaCl-Lösung (0,9%) Aqua bidest. wurde als Kontrolle verwendet. Der Reduktionsfaktor (RF) wurde aus der Differenz lg Nachwert – lg Vorwert der Anzahl koloniebildender Einheiten berechnet. Ergebnisse Unabhängig von ihrer Zusammensetzung zeigten die Prüflösungen in der gewählten Testanordnung eine Ablösung des Biofilms aus P. aeruginosa (Reinigungsleistung) von im Durchschnitt 31-34%. Damit war die Reinigungsleistung der von aqua bidest. (18%) überlegen (Abbildung 2 ). Bei der Inaktivierung der Biofilme war Octenidin mit einem RF-Wert von lg=4,7 dem von Polihexanid überlegen (RF lg=3,7). Erwartungsgemäß zeigten die reinen Salzlösungen hierbei keine relevanten Koloniezahlreduktionen (Abbildung 3 ). Diskussion Die Ergebnisse in dem gewählten Modell zeigen, dass der Zusatz von antimikrobiellen Substanzen (Octenidin, Polihexanid) zu Salzlösungen im Unterschied z.B. zur bekannten Eiweiß-fixierenden Wirkung von Aldehyden keinen negativen Einfluss auf die Ablösung von Biofilmen hat, d.h. es findet keine Fixierung proteinhaltiger Oberflächenbeläge statt. Der Vorteil der antimikrobiellen Substanzen in den verwendeten Salzlösungen liegt offensichtlich darin, dass die Substanzen in der Lage sind, zusätzlich zum Ablösevermögen der Lösung in den Biofilm einzudringen und die darin enthaltenen Bakterien zu inaktivieren. Mit der gewählten Methode konnten die Ergebnisse von Seipp et al. nicht bestätigt werden, wonach Salzlösungen nicht in der Lage sind, Biofilme von Oberflächen abzulösen. Diese Diskrepanz kann verschiedene Ursachen haben. So wurden von den Autoren u.a. Silikonschläuche als Oberflächenmaterialien verwendet. Zudem wurde anstatt eines Protein-Nachweises ein Endotoxin-Nachweis als Maß für die Ablösung des Biofilms verwendet. Diese widerspüchlichen Befunde lassen es notwendig erscheinen, vergleichende Untersuchungen unter in vivo-Bedingungen (z.B. in der Wunde) durchzuführen. Costerton JW 2007 The Biofilm Primer - Springer Series on Biofilms Costerton JW. The Biofilm Primer - Springer Series on Biofilms. Berlin / Heidelberg: Springer-Verlag; 2007. Costerton JW Steward PS Greenberg EP Bacterial Biofilms: A common cause of persistent infections 1999 Science 1318-22 Costerton JW, Steward PS, Greenberg EP. Bacterial Biofilms: A common cause of persistent infections. Science. 1999;284:1318-22. Kampf G Bloss R Martiny H Surface fixation of dried blood by glutaraldehyde and peracetic acid 2004 J Hosp Infect 139-43 Kampf G, Bloss R, Martiny H. Surface fixation of dried blood by glutaraldehyde and peracetic acid. J Hosp Infect. 2004;57(2):139-43. Seipp HM Hofmann S Hack A Skowronsky A Hauri A Wirksamkeit verschiedener Wundspüllösungen gegenüber Biofilmen 2005 ZfW 160-4 Seipp HM, Hofmann S, Hack A, Skowronsky A, Hauri A. Wirksamkeit verschiedener Wundspüllösungen gegenüber Biofilmen. ZfW. 2005:160-4. 0

1 1 Abbildung 1: Aufsicht auf einen Biofilm-Reaktor bestückt mit Objektträgern zur Herstellung der Biofilme

2 2 Abbildung 2: Ablösung eines 1 Woche angezüchteten Biofilms von P. aeruginosa auf Polycarbonat-Objektträgern nach 60 min Kontakt mit verschiedenen Wundspüllösungen

3 3 Abbildung 3: Inaktivierung eines 1 Woche angezüchteten Biofilms von P. aeruginosa auf Polycarbonat-Objektträgern nach 60 min Kontakt mit verschiedenen Wundspüllösungen

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