Einsatz der Laser-Scan-Mikroskopie zur Charakterisierung der Wundheilung

dgkh000070 Originalarbeit Einsatz der Laser-Scan-Mikroskopie zur Charakterisierung der Wundheilung Application of laser scanning microscopy for the characterization of wound healing Alborova Alborova Alena A

Bereich Hautphysiologie der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Charité - Universitätsmedizin, Berlin, Deutschland

author Lademann Lademann Jürgen J Prof. Dr. Dr.-Ing.

Bereich Hautphysiologie der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Charité - Universitätsmedizin, Charitéplatz 1, 10117 Berlin, Deutschland, Tel. 030/450 518 100, Fax 030/450 518 918Bereich Hautphysiologie der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Charité - Universitätsmedizin, Berlin, Deutschland

juergen.lademann@charite.de author Meyer Meyer Lars L Prof. Dr. Dr.-Ing.

Bereich Hautphysiologie der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Charité - Universitätsmedizin, Berlin, Deutschland

author Kramer Kramer Axel A Prof. Dr. med.

Institut für Hygiene und Umweltmedizin der Ernst-Moritz-Arndt-Universität, Walther-Rathenau-Straße 49 a, 17489 GreifswaldInstitut für Hygiene und Umweltmedizin der Ernst-Moritz-Arndt-Universität, Greifswald, Deutschland

kramer@uni-greifswald.de author Patzelt Patzelt Alexa A

Bereich Hautphysiologie der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Charité - Universitätsmedizin, Berlin, Deutschland

author Sterry Sterry Wolfram W

Bereich Hautphysiologie der Klinik für Dermatologie, Venerologie und Allergologie, Charité - Universitätsmedizin, Berlin, Deutschland

author Antoniou Antoniou Christina C

Sygros Hospital, Dept. of Dermatology and Photobiology, University Athens, 5, Dragoumi str., Athens, GreeceSygros Hospital, Dept. of Dermatology and Photobiology, University, Athens, Greece

author German Medical Science GMS Publishing House

Düsseldorf

610 In-vivo-Laser-Scan-Mikroskopie transepidermaler Wasserverlust Wundheilungsanalyse Saugblasentechnik 20071228 germ 1863-5245 2 2 GMS Krankenhaushygiene Interdisziplinär GMS Krankenhaushyg Interdiszip Die infizierte Problemwunde 2007 - The infected problem wound 2007 37 Optische, nicht invasive Verfahren finden in der Dermatologie zur Charakterisierung von Hautzuständen und zur Therapiekontrolle eine zunehmende Anwendung. Besonders geeignet ist hierfür die In-vivo-Laser-Scan-Mikroskopie, welche es ermöglicht, zelluläre Strukturen bis zu einer Tiefe von 250 µm in der Haut nachzuweisen. Damit eignet sich die In-vivo-Laser-Scan-Mikroskopie sehr gut, Wundheilungsprozesse zu charakterisieren. Im Gegensatz zur klassischen Analyse von Wundheilungsprozessen mit Hilfe des transepidermalen Wasserverlustes (TEWL) ermöglicht die In-vivo-Laser-Scan-Mikroskopie die Darstellung des Heilungsprozesses auf zellulärer Ebene. Mit Bewertungskriterien, welche die Stadien des Wundheilungsprozesses beschreiben, lässt sich der Heilungsprozess numerisch beschreiben. Die Untersuchungen zeigen, dass die Wundheilung nicht nur von den Rändern her erfolgt, sondern auch innerhalb der Wunde "Inseln" entstehen, von welchen die Erneuerung des Stratum corneum erfolgt. Im Gegensatz zu den TEWL-Messungen werden laser-scan-mikroskopische Untersuchungen nicht durch äußere Faktoren wie Temperatur, Luftfeuchtigkeit und topisch applizierte Substanzen gestört. Die In-vivo-Laser-Scan-Mikroskopie ist sehr gut dazu geeignet, die Wirkung von verschiedenen Formen der Wundbehandlung einschließlich der Applikation von Wundsalben zu charakterisieren. Optical non-invasive methods have become more and more important for the characterization of skin lesions and for therapy control. In vivo laser scanning microscopy is a promising method which can be used for the analysis of cellular structures in the skin up to a depth of 250 µm. Therefore, laser scanning microscopy (LSM) is well-suited for the characterization of wound healing processes. In contrast to measurements of the transepidermal waterloss (TEWL) the laser scanning microscopy allows the analysis of the healing process on a cellular level. The course of wound healing determined by laser scanning microscopy was correlated with numerical values, which correspond to those used for measurements of TEWL, allowing the numerical characterization of the wound healing process. Laser scanning microscopy showed that wound healing starts not only from the wound edges but also from "islands" inside the wound area. In contrast to TEWL measurements the LSM analysis is not influenced by disturbing factors such as temperature, humidity and topically applied substances. Therefore, the laser scanning microscopy is well-suited for the characterization of different types of wound healing therapies including the topical application of creams and lotions. Einleitung Die Haut stellt das Kontaktorgan zwischen der Umwelt und unserem Organismus dar. Sie besitzt vielfältige Funktionen wie Schutz gegen mechanische und chemische Einwirkungen sowie gegen UV-Strahlung, hat Bedeutung für die Wärmeregulierung und den Tastsinn und besitzt damit eine große Bedeutung für den Gesamtorganismus . Verletzungen führen zum Verlust der Integrität des Gewebes, wobei der Organismus versucht, diese Wunden schnell zu schließen und die Funktion des beschädigten Gewebes wieder herzustellen . Eine Verbesserung der Wundheilung ist in verschiedenen Bereichen der Medizin von besonderem Interesse und stellt eine wichtige Herausforderung im Klinikalltag dar . Ein wichtiges Augenmerk liegt auf der Vermeidung von Wundinfektionen und der Beschleunigung der Epithelisierung. Die Standardmethode zur Charakterisierung des Wundheilungsprozesses besteht in der Messung des transepidermalen Wasserverlustes (TEWL) , , . TEWL-Messungen haben den Nachteil, dass sie stark durch äußere Faktoren beeinflusst werden. Die Raumtemperatur und Luftfeuchtigkeit müssen konstante Werte aufweisen, die Probanden dürfen nicht schwitzen . Ein wesentlicher Nachteil der TEWL-Messungen besteht darin, dass topisch applizierte Substanzen wie Pflegecremes und Wundsalben die TEWL-Messungen stören . Eine Alternative zu dieser Methode stellt die bildgebende In-vivo-Analyse des Wundheilungsprozesses mit Hilfe der Laser-Scan-Mikroskopie (LSM) dar . Dermatologische Laser-Scan-Mikroskope ermöglichen es, unter Einsatz von optischen Lichtleitfasern jedes Hautareal des menschlichen Körpers in vivo zu analysieren . In der vorliegenden Arbeit werden die Möglichkeiten dieser neuen Technologie zur Charakterisierung des Wundheilungsprozesses beschrieben. Materialien und Methoden TEWL-Messungen Die Messung des transepidermalen Wasserverlustes ist eine klassische, anerkannte, häufig eingesetzte Methode zur Untersuchung der Wundheilung und zur Charakterisierung der Barrierefunktion der menschlichen Haut . Eine geschädigte Haut lässt mehr Wasser durch als eine intakte Barriere . Nachteil dieser Methode ist, dass zu Beginn der Wundheilung, solange die Wunde feucht ist, keine Messung möglich ist. Ferner sind weder Aussagen zur Reepithelisierung auf zellulärer Ebene noch zur bakteriellen Besiedlung der Wunde möglich. In den vorliegenden Untersuchungen wurde der transepidermale Wasserverlust mit Hilfe des TEWA-Meters TM 210® (Courage + Khazaka Elektronik GmbH Köln) gemessen. In-vivo-Laser-Scan-Mikroskopie Die Untersuchungen zur Kinetik der Wundheilung wurden mit dem dermatologischen Laser-Scan-Mikroskop "Stratum" (OptiScan Ltd. Melbourne, Australien) unter In-vivo-Bedingungen durchgeführt. Bei diesem Gerät ist ein Handstück, das das optische Abbildungs- und Fokussierungssystem enthält, über Lichtleiter mit dem Laser- und Detektionssystem verbunden . Dadurch ist es möglich, das Handstück auf jede beliebige Körperstelle aufzusetzen (Abbildung 1 ). Die Position des Fokus im Gewebe kann manuell am Handstück geregelt werden. Dadurch ist es möglich, unterschiedliche Hautschichten zu analysieren. Die Messfläche beträgt 250 x 250 µm, die maximale Detektionstiefe beträgt 250 µm. Die zellulären Strukturen im Gewebe werden durch Auftragen eines fluoreszierenden Farbstoffs sichtbar gemacht . Erzeugung standardisierter Wunden Mit Hilfe der von Kiistala beschriebenen Saugblasentechnik ist es möglich, definierte, reproduzierbare Hautdefekte zu erzeugen. Dabei kommt es zur Trennung von Epidermis und Dermis auf der Ebene der Basalmembran. Diese Methode wird häufig bei Wundheilungsstudien eingesetzt. Die Saugblase wird erzeugt, indem ein Unterdruck von 200 mm Hg über einen Zeitraum von 120 min auf die Hautoberfläche einwirkt . Nach der Entfernung des Blasendachs entsteht eine oberflächliche Wunde, die innerhalb weniger Tage narbenfrei abheilt (Abbildung 2 ). Ergebnisse und Diskussion LSM-Untersuchungen am gesunden Gewebe Mit Hilfe der LSM können unterschiedliche Gewebeschichten analysiert werden. Das Stratum corneum besteht aus abgeflachten, keratinisierten, kernlosen Korneozyten, die von Lipidschichten umgeben sind. Auch das darunter liegende Stratum spinosum kann mit Hilfe der LSM klar dargestellt werden. Die Zellen sind wesentlich kleiner, wobei Zellkerne zu erkennen sind. In einer Tiefe von ca. 200 µm ist die Papillarstruktur erkennbar (Abbildung 3 ). Während eine Biopsie normalerweise einen vertikalen Schnitt durch das Gewebe darstellt, wird durch die LSM eine horizontale Fläche im Gewebe analysiert. Zum besseren Vergleich zeigt Abbildung 4 zwei horizontale Schnitte einer Biopsie, die klar das Stratum corneum (SC) und das Stratum spinosum (SS) mit der Papillarstruktur (PS) zeigen. Analoge Strukturen sind mit Hilfe der LSM darstellbar (Abbildung 5 ), wobei es sich hierbei um einen nichtinvasiven Prozess handelt. Eine wichtige Variable für die Charakterisierung der Wundheilung ist die Herausbildung des Stratum corneum. Abbildung 6 zeigt einen vertikalen Schnitt einer Biopsie. Das Stratum corneum ist klar erkennbar. Die reale Schichtdicke des Stratum corneum unter In-vivo-Bedingungen kann jedoch nicht anhand von Biopsien ermittelt werden, da sich während des Präparationsprozesses die Eigenschaften und die Abmessungen des Stratum corneum ändern. Im Gegensatz dazu ermöglicht die LSM eine eindeutige In-vivo-Bestimmung der Schichtdicke des Stratum corneum (Abbildung 7 ). Hierzu ist es notwendig, den Abstand zwischen der Hautoberfläche und der Grenzschicht vom Stratum corneum zum Stratum spinosum zu ermitteln. Das ist möglich durch eine Verschiebung der Focusebene in tiefere Gewebeschichten. Das linke Bild in Abbildung 7 zeigt die Hautoberfläche mit dem Stratum corneum (SC), während das rechte Bild die Grenze zwischen Stratum corneum und Stratum granulosum darstellt. Im unteren Teil der Abbildung sind noch Korneozyten zu erkennen, während im oberen Teil die lebenden Zellen des Stratum granulosum (GS) sichtbar sind. Analyse der Wundheilung Nach der Entfernung des Blasendachs ist die Hautoberfläche der Wunde mit Wundsekret bedeckt. Dieses trocknet ein und bildet eine krustenförmige Struktur. Darunter sind klar die lebenden Zellen des Stratum granulosum und des Stratum basale erkennbar. Nach einigen Tagen bildet sich die erste Schicht der Korneozyten heraus (Abbildung 8 ). Die Neubildung des Stratum corneum erfolgt nicht nur von den Wundrändern her, sondern auch aus einzelnen "Inseln" im Bereich der Wundfläche, die sich vergrößern, so dass eine erste Zelllage von Korneozyten die Wundfläche bedeckt. Im Verlauf der Wundheilung bilden sich immer neue Zelllagen von Korneozyten heraus, bis sich das Stratum corneum vollständig erneuert hat. Die Anordnung der Korneozyten auf der Hautoberfläche ist in diesem Anfangsstadium noch sehr unregelmäßig (Abbildung 9 ) und weist eine ähnliche Oberflächenstruktur auf wie die trockene Haut. Erst nach ca. 10 Tagen hat die Hautoberfläche ihre ursprüngliche homogene Struktur wieder erreicht (Abbildung 10 ). Um die laser-scan-mikroskopische Analyse des Wundheilungsprozesses – ähnlich wie bei TEWL-Messungen – auch numerisch bewerten zu können, wurden folgende Kriterien eingeführt: Stadium I: Die Wunde ist von Wundsekret bedeckt, das eine Kruste bildet. Stadium II: Die erste Lage des Stratum corneum bildet sich heraus. Stadium III: Das Stratum corneum ist voll ausgebildet. Diese Kriterien wurden genutzt, um im Rahmen einer Studie die Wundheilung mit und ohne Applikation einer Wundsalbe zu charakterisieren. Die laser-scan-mikroskopischen Untersuchungen erfolgten direkt nach der Entfernung des Blasendachs am Tag 1 sowie an den Tagen 3, 5, 7 und 8 an jeweils sechs Probanden. Das Stadium I wurde durch die Zahl 1 charakterisiert. Analog erfolgte die Charakterisierung der Stadien II und III. Die Mittelwerte der Ergebnisse, die sich aus den Messungen an sechs Probanden ergeben, sind in Tabelle 1 dargestellt. Am Tag 1 sind alle Wunden mit Wundsekret bedeckt. Am Tag 5 hatte sich die erste Schicht der Korneozyten fast voll herausgebildet, wenn die Wunde mit der Wundsalbe behandelt wurde. Die unbehandelte Wunde zeigte hierbei einen wesentlich schlechteren Heilungsverlauf. Unter den Bedingungen der Behandlung mit Wundsalbe hatte sich das Stratum corneum nach 8 Tagen</PlainText></TextGroup> wieder voll herausgebildet, während die unbehandelte Wunde nur einige wenige Zelllagen des Stratum corneum aufwies. </Pgraph> </TextBlock> <TextBlock linked="yes" name="Schlussfolgerung"> <MainHeadline>Schlussfolgerung</MainHeadline> <Pgraph>Die In-vivo-LSM wird nicht, wie TEWL-Messungen, durch äußere Faktoren gestört und ist auch dann einsetzbar, wenn eine Behandlung der Wunde mit Salben oder Flüssigkeiten erfolgt. Die LSM ist gut geeignet, die Kinetik von Wundheilungsprozessen zu analysieren und stellt damit eine Grundlage für die Bewertung von topisch applizierten Arzneimitteln und Pflegeprodukten sowie von therapeutischen Maßnahmen dar. </Pgraph> <Pgraph>Die ortsaufgelösten LSM-Messungen zeigen, dass die Neubildung der Barriere in Form des Stratum corneum nicht nur vom Wundrand aus erfolgt. Auch in der Wundfläche wurden einzelne "Inseln" beobachtet, wo sich das Stratum corneum neu bildet.</Pgraph> </TextBlock> <TextBlock linked="yes" name="Danksagung"> <MainHeadline>Danksagung</MainHeadline> <Pgraph>Wir danken der Stiftung für Hautphysiologie des Stifterverbandes für die Deutsche Wissenschaft und der Dr. med. h. d. Erwin Braun Stiftung Basel für die finanzielle Unterstützung. </Pgraph> </TextBlock> <References linked="yes"> <Reference refNo="1"> <RefAuthor>Braun-Falko 0</RefAuthor> <RefAuthor>Plewig G</RefAuthor> <RefAuthor>Wolff HH</RefAuthor> <RefTitle>Dermatologie und Venerologie</RefTitle> <RefYear>1993</RefYear> <RefTotal>Braun-Falko 0, Plewig G, Wolff HH. Dermatologie und Venerologie. Berlin: Blackwell; 1993. p. 134-6.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="2"> <RefAuthor>Johnson & Johnson Wound Management</RefAuthor> <RefTitle>Vorgänge der Wundheilung</RefTitle> <RefYear>2007</RefYear> <RefTotal>Johnson & Johnson Wound Management. Vorgänge der Wundheilung. MedizInfo® [homepage on the Internet, cited 2007 Oct 15]. Available from: http://www.medizinfo.com/wundmanagement/wundheilung.htm</RefTotal> <RefLink>http://www.medizinfo.com/wundmanagement/wundheilung.htm</RefLink> </Reference> <Reference refNo="3"> <RefAuthor>Li W</RefAuthor> <RefAuthor>Dasgeb B</RefAuthor> <RefAuthor>Phillips T</RefAuthor> <RefAuthor>Li Y</RefAuthor> <RefAuthor>Chen M</RefAuthor> <RefAuthor>Garner W</RefAuthor> <RefAuthor>Woodley DT</RefAuthor> <RefTitle>Wound-healing perspectives</RefTitle> <RefYear>2005</RefYear> <RefJournal>Dermatol Clin</RefJournal> <RefPage>181-92</RefPage> <RefTotal>Li W, Dasgeb B, Phillips T, Li Y, Chen M, Garner W, Woodley DT. Wound-healing perspectives. Dermatol Clin. 2005;23(2):181-92.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="4"> <RefAuthor>Short RW</RefAuthor> <RefAuthor>Chan JL</RefAuthor> <RefAuthor>Choi JM</RefAuthor> <RefAuthor>Egbert BM</RefAuthor> <RefAuthor>Rehmus WE</RefAuthor> <RefAuthor>Kimball A</RefAuthor> <RefTitle>Effects of moisturization on epidermal homeostasis and differentiation</RefTitle> <RefYear>2007</RefYear> <RefJournal>Clin Exp Dermatol</RefJournal> <RefPage>88-90</RefPage> <RefTotal>Short RW, Chan JL, Choi JM, Egbert BM, Rehmus WE, Kimball A. Effects of moisturization on epidermal homeostasis and differentiation. Clin Exp Dermatol. 2007;32(1):88-90.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="5"> <RefAuthor>Atiyeh BS</RefAuthor> <RefAuthor>El-Musa KA</RefAuthor> <RefAuthor>Dham R</RefAuthor> <RefTitle>Scar quality and physiologic barrier function restoration after moist and moist-exposed dressings of partial-thickness wounds</RefTitle> <RefYear>2003</RefYear> <RefJournal>Dermatol Surg</RefJournal> <RefPage>14-20</RefPage> <RefTotal>Atiyeh BS, El-Musa KA, Dham R. Scar quality and physiologic barrier function restoration after moist and moist-exposed dressings of partial-thickness wounds. Dermatol Surg. 2003; 29(1):14-20.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="6"> <RefAuthor>Visscher M</RefAuthor> <RefAuthor>Hoath SB</RefAuthor> <RefAuthor>Conroy E</RefAuthor> <RefAuthor>Wickett RR</RefAuthor> <RefTitle>Effect of semipermeable membranes on skin barrier repair following tape stripping</RefTitle> <RefYear>2001</RefYear> <RefJournal>Arch Dermatol Res</RefJournal> <RefPage>491-9</RefPage> <RefTotal>Visscher M, Hoath SB, Conroy E, Wickett RR. Effect of semipermeable membranes on skin barrier repair following tape stripping. Arch Dermatol Res. 2001;293(10):491-9.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="7"> <RefAuthor>Weigmann HJ</RefAuthor> <RefAuthor>Ulrich J</RefAuthor> <RefAuthor>Schanzer S</RefAuthor> <RefAuthor>Jacobi U</RefAuthor> <RefAuthor>Schaefer H</RefAuthor> <RefAuthor>Sterry W</RefAuthor> <RefAuthor>Lademann J</RefAuthor> <RefTitle>Comparison of transepidermal water loss and spectroscopic absorbance to quantify changes of the stratum corneum after tape stripping</RefTitle> <RefYear>2005</RefYear> <RefJournal>Skin Pharmacol Physiol</RefJournal> <RefPage>180-5</RefPage> <RefTotal>Weigmann HJ, Ulrich J, Schanzer S, Jacobi U, Schaefer H, Sterry W, Lademann J. Comparison of transepidermal water loss and spectroscopic absorbance to quantify changes of the stratum corneum after tape stripping. Skin Pharmacol Physiol. 2005; 18(4):180-5.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="8"> <RefAuthor>Siebert J</RefAuthor> <RefTitle></RefTitle> <RefYear>2005</RefYear> <RefBookTitle>Bestimmung der individuellen Hornschichtdicke über die Abrissmethode [Dissertation Med]</RefBookTitle> <RefPage></RefPage> <RefTotal>Siebert J. Bestimmung der individuellen Hornschichtdicke über die Abrissmethode [Dissertation Med]. Berlin: Charité-Universitätsmedizin; 2005</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="9"> <RefAuthor>Lademann J</RefAuthor> <RefAuthor>Richter H</RefAuthor> <RefAuthor>Otberg N</RefAuthor> <RefAuthor>Lawrenz F</RefAuthor> <RefAuthor>Blume-Peytavi U</RefAuthor> <RefAuthor>Sterry W</RefAuthor> <RefTitle>Application of a dermatological laser scanning confocal microscope for investigation in skin physiology</RefTitle> <RefYear>2003</RefYear> <RefJournal>Laser Phys</RefJournal> <RefPage>756-60</RefPage> <RefTotal>Lademann J, Richter H, Otberg N, Lawrenz F, Blume-Peytavi U, Sterry W. Application of a dermatological laser scanning confocal microscope for investigation in skin physiology. Laser Phys. 2003;13(5):756-60.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="10"> <RefAuthor>Lademann J</RefAuthor> <RefAuthor>Otberg N</RefAuthor> <RefAuthor>Richter H</RefAuthor> <RefAuthor>Jacobi U</RefAuthor> <RefAuthor>Blume-Peytavi U</RefAuthor> <RefAuthor>Schaefer H</RefAuthor> <RefAuthor>Sterry W</RefAuthor> <RefTitle>Application of laser scanning microscopy for penetration studies of topically applied substances</RefTitle> <RefYear>2004</RefYear> <RefJournal>JDDG</RefJournal> <RefPage>518</RefPage> <RefTotal>Lademann J, Otberg N, Richter H, Jacobi U, Blume-Peytavi U, Schaefer H, Sterry W. Application of laser scanning microscopy for penetration studies of topically applied substances. JDDG. 2004;2 (6):518.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="11"> <RefAuthor>Kiistala U</RefAuthor> <RefAuthor>Mustakallio KK</RefAuthor> <RefTitle>In vitro separation of epidermis by production of suction blisters</RefTitle> <RefYear>1964</RefYear> <RefJournal>Lancet</RefJournal> <RefPage>1444-5</RefPage> <RefTotal>Kiistala U, Mustakallio KK. In vitro separation of epidermis by production of suction blisters. Lancet. 1964; 42:1444-5.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="12"> <RefAuthor>Lademann J</RefAuthor> <RefAuthor>Jacobi U</RefAuthor> <RefAuthor>Richter H</RefAuthor> <RefAuthor>Otberg N</RefAuthor> <RefAuthor>Weigmann H-J</RefAuthor> <RefAuthor>Meffert H</RefAuthor> <RefAuthor>Schaefer H</RefAuthor> <RefAuthor>Blume-Peytavi U</RefAuthor> <RefAuthor>Sterry W</RefAuthor> <RefTitle>In vivo determination of UV-photons entering into human skin</RefTitle> <RefYear>2004;14(2)</RefYear> <RefJournal>Laser Phys</RefJournal> <RefPage></RefPage> <RefTotal>Lademann J, Jacobi U, Richter H, Otberg N, Weigmann H-J, Meffert H, Schaefer H, Blume-Peytavi U, Sterry W. In vivo determination of UV-photons entering into human skin. Laser Phys. 2004;14(2);234-7.</RefTotal> </Reference> </References> <Media> <Tables> <Table format="png"> <MediaNo>1</MediaNo> <MediaID>1</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Tabelle 1: Bewertung der Wundheilung mit und ohne Behandlung mit Wundsalbe</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Table> <NoOfTables>1</NoOfTables> </Tables> <Figures> <Figure format="png" height="355" width="697"> <MediaNo>1</MediaNo> <MediaID>1</MediaID> <Caption> <Pgraph><Mark1>Abbildung 1: In-vivo-Laser-Scan-Mikroskop "Stratum" mit frei beweglichem Handstück, das das optische Abbildungssystem und die Fokusregulierung beeinhaltet</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="304" width="399"> <MediaNo>2</MediaNo> <MediaID>2</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 2: Standardisierte Wunden werden mit Hilfe der Saugblasentechnik erzeugt</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="274" width="694"> <MediaNo>3</MediaNo> <MediaID>3</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 3: Laser-Scan-mikroskopische Darstellung von zellulären Strukturen in unterschiedlichen Hautschichten </Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="305" width="649"> <MediaNo>4</MediaNo> <MediaID>4</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 4: Horizontale histologische Schnitte, die das Stratum corneum (SC) und das Stratum spinosum (SS) mit der Papillarstruktur (PS) zeigen</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="313" width="608"> <MediaNo>5</MediaNo> <MediaID>5</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 5: In-vivo-laser-scan-mikroskopische Aufnahmen, die das Stratum corneum (SC) und das Stratum basale (SB) mit der Papillarstruktur (PS) zeigen</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="301" width="343"> <MediaNo>6</MediaNo> <MediaID>6</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 6: In histologischen Schnitten ist das Stratum corneum genau erkennbar</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="301" width="578"> <MediaNo>7</MediaNo> <MediaID>7</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 7: Laser-scan-mikroskopische Bestimmung der Schichtdicke des Stratum corneum; die Fokusebene wird von der Hautoberfläche (linkes Bild) bis an die Grenze zur lebenden Epidermis (rechtes Bild) verschoben</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="355" width="354"> <MediaNo>8</MediaNo> <MediaID>8</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 8: Herausbildung der ersten Korneozytenschicht auf der Wunde</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="349" width="348"> <MediaNo>9</MediaNo> <MediaID>9</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 9: Hautoberfläche und unregelmäßige Anordnung der Korneozyten</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <Figure format="png" height="344" width="346"> <MediaNo>10</MediaNo> <MediaID>10</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Abbildung 10: Regelmäßige Anordnung der Korneozyten an der Hautoberfläche</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Figure> <NoOfPictures>10</NoOfPictures> </Figures> <InlineFigures> <NoOfPictures>0</NoOfPictures> </InlineFigures> <Attachments> <NoOfAttachments>0</NoOfAttachments> </Attachments> </Media> </OrigData> </GmsArticle>