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<GmsArticle>
  <MetaData>
    <Identifier>dgkh000068</Identifier>
    <ArticleType>Originalarbeit</ArticleType>
    <TitleGroup>
      <Title language="de">Revitalisierung von S&#228;ugerzellen nach Einwirkung von Antiseptika</Title>
      <TitleTranslated language="en">Revitalisation of mammalian cells exposed to antiseptics</TitleTranslated>
    </TitleGroup>
    <CreatorList>
      <Creator>
        <PersonNames>
          <Lastname>M&#252;ller</Lastname>
          <LastnameHeading>M&#252;ller</LastnameHeading>
          <Firstname>Gerald</Firstname>
          <Initials>G</Initials>
        </PersonNames>
        <Address>
          <Affiliation>Institut f&#252;r Hygiene und Umweltmedizin der Ernst-Moritz-Arndt-Universit&#228;t, Greifswald, Deutschland</Affiliation>
        </Address>
        <Creatorrole corresponding="no" presenting="no">author</Creatorrole>
      </Creator>
      <Creator>
        <PersonNames>
          <Lastname>Kramer</Lastname>
          <LastnameHeading>Kramer</LastnameHeading>
          <Firstname>Axel</Firstname>
          <Initials>A</Initials>
          <AcademicTitle>Prof. Dr. med.</AcademicTitle>
        </PersonNames>
        <Address>Institut f&#252;r Hygiene und Umweltmedizin der Ernst-Moritz-Arndt-Universit&#228;t, Walther-Rathenau-Str. 49 a, 17489 Greifswald, Deutschland, Tel.: &#43;49-(0)3834-515542, Telefax: &#43;49-(0)3834-515541<Affiliation>Institut f&#252;r Hygiene und Umweltmedizin der Ernst-Moritz-Arndt-Universit&#228;t, Greifswald, Deutschland</Affiliation></Address>
        <Email>kramer&#64;uni-greifswald.de</Email>
        <Creatorrole corresponding="yes" presenting="no">author</Creatorrole>
      </Creator>
    </CreatorList>
    <PublisherList>
      <Publisher>
        <Corporation>
          <Corporatename>German Medical Science</Corporatename>
        </Corporation>
        <Address>D&#252;sseldorf, K&#246;ln</Address>
      </Publisher>
    </PublisherList>
    <SubjectGroup>
      <SubjectheadingDDB>610</SubjectheadingDDB>
      <Keyword language="en">revitalization of cells</Keyword>
      <Keyword language="en">octenidine dihydrochloride</Keyword>
      <Keyword language="en">polihexanide</Keyword>
      <Keyword language="en">chlorhexidine digluconate</Keyword>
      <Keyword language="en">silver-based antiseptics</Keyword>
      <Keyword language="de">Zellrevitalisierung</Keyword>
      <Keyword language="de">Octenidindihydrochlorid</Keyword>
      <Keyword language="de">Polihexanid</Keyword>
      <Keyword language="de">Chlorhexidindigluconat</Keyword>
      <Keyword language="de">Silber-basierte Antiseptika</Keyword>
    </SubjectGroup>
    <DatePublishedList>
      <DatePublished>20071228</DatePublished>
    </DatePublishedList>
    <Language>germ</Language>
    <SourceGroup>
      <Journal>
        <ISSN>1863-5245</ISSN>
        <Volume>2</Volume>
        <Issue>2</Issue>
        <JournalTitle>GMS Krankenhaushygiene Interdisziplin&#228;r</JournalTitle>
        <JournalTitleAbbr>GMS Krankenhaushyg Interdiszip</JournalTitleAbbr>
        <IssueTitle>Die infizierte Problemwunde 2007 - The infected problem wound 2007</IssueTitle>
      </Journal>
    </SourceGroup>
    <ArticleNo>35</ArticleNo>
  </MetaData>
  <OrigData>
    <Abstract language="de" linked="yes">
      <Pgraph>Die antiseptischen Wirkstoffe Octenidindihydrochlorid (OCT), Polihexanid (PHMB) und Polyvinylpyrrolidon-Iod (PVP-I) wurden gegen&#252;ber Epithelzellen (CHO-K1, ATCC CCL61) und Fibroblasten (L929, ATCC CCL1) hinsichtlich ihrer unmittelbaren (nach 30 min Kontakt) und nachfolgenden (auf die 30 min Kontakt folgende 24 h Folgekultur ohne Wirkstoff) zytotoxischen Reaktion im Vergleich zu Chlorhexidindigluconat (CHX) und silberhaltigen Pr&#228;paraten untersucht. Als Nachweisverfahren wurden der MTT-Test (intrazellul&#228;re Zytotoxizit&#228;t) und der Neutralrot (NR)-Test (Zellmembransch&#228;digung) verwendet.</Pgraph>
      <Pgraph>Konzentrationen von PVP-I, die bei den Pr&#252;fzellen nach 30 min Exposition einen Vitalit&#228;tserhalt &#62;20&#37; gew&#228;hrleisten, revitalisieren w&#228;hrend der 24 h Folgekultur ohne Wirkstoff vollst&#228;ndig. </Pgraph>
      <Pgraph>Die zytotoxische Wirkung von PHMB ist nur f&#252;r die Zellmembran-Zytotoxizit&#228;t bei Konzentrationen unterhalb der IC<Subscript>50</Subscript> teilweise reversibel. Eine vollst&#228;ndige Revitalisierung ist jedoch nicht m&#246;glich, da gleichzeitig die intrazellul&#228;re zytotoxische Wirkung von PHMB zunimmt. </Pgraph>
      <Pgraph>Die zytotoxische Wirkung von OCT, CHX und silberhaltigen Pr&#228;paraten ist irreversibel. Der von den Zellen gebundene Wirkstoff bleibt gebunden und verst&#228;rkt w&#228;hrend der 24 h Folgekultur seine zytotoxische Wirkung. Zellgebundenes OCT besitzt jedoch gegen&#252;ber zellgebundenem CHX den Vorteil, dass es gegen&#252;ber Mikrorganismen biologisch aktiv bleibt. </Pgraph>
    </Abstract>
    <Abstract language="en" linked="yes">
      <Pgraph>The cytotoxic activity of the antiseptics octenidine dihydrochloride (OCT), polihexanid (PHMB), and povidone iodine (PVP-I) were investigated on epithelial cells (CHO-K1, ATCC CCL61) and fibroblasts (L929, ATCC CCL1) both immediately after 30 min exposure and after 30 min exposure followed by a culture after 24 h without active agents and compared with chlorhexidine digluconate (CHX), and silver-containing formulations. The cytotoxic reaction was detected using MTT assay (intracellular cytotoxicity) and neutral red (NR) assay (damage of the cell membrane).</Pgraph>
      <Pgraph>Concentrations of PVP-I resulting after 30 min in &#62;20&#37; vitality revitalize after 24 h of culture without PVP-I.</Pgraph>
      <Pgraph>The cytotoxic effect of PHMB is only partially reversible in the cell membrane cytotoxicity at concentrations below the IC<Subscript>50</Subscript> (vitality &#62;50&#37;). A total revitalization was impossible, because simutaneously the intracellular cytotoxicity increases during the 24 h culture.</Pgraph>
      <Pgraph>The cytotoxic effect of OCT, CHX, and silver-containing formulations is irreversible, but only the cell-bound OCT remains biologically activity against microorganisms.</Pgraph>
    </Abstract>
    <TextBlock linked="yes" name="Einleitung">
      <MainHeadline>Einleitung</MainHeadline>
      <Pgraph>Der Wunsch beim Einsatz von antiseptischen Wirkstoffen besteht darin, dass das verwendete Antiseptikum eine bevorzugte Wirkung gegen&#252;ber Mikroorganismen besitzt und die Wundheilung nicht beeintr&#228;chtigt. Realit&#228;t ist jedoch, dass bei der Mehrzahl der antiseptischen Wirkstoffe als unerw&#252;nschte Begleiterscheinung eine sch&#228;digende Wirkung in tierischen und menschlichen Geweben, insbesondere gegen&#252;ber den Zellen, auftritt. Deshalb ist es notwendig zu kl&#228;ren, wenn schon eine Zellsch&#228;digung nicht auszuschlie&#223;en ist, wie sich die Zellen nach einer Sch&#228;digung verhalten, d.h. ob die verursachte Zellsch&#228;digung ggf. reversibel oder aber irreversibel ist.</Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Methoden">
      <MainHeadline>Methoden</MainHeadline>
      <Pgraph>F&#252;r die durchgef&#252;hrten Untersuchungen wurden M&#228;usefibroblasten der Linie L929 (ATCC CCL1) und Epithelzellen von Meerschweinchen der Linie CHO-K1 (ATCC CCL61) als Pr&#252;fzellen verwendet. Als antiseptische Wirkstoffe wurden Octenidindihydrochlorid (OCT) in Form von Octenisept<Superscript>&#174;</Superscript> (Sch&#252;lke &#38; Mayr GmbH, Norderstedt), PVP-I in Form von Repithel<Superscript>&#174;</Superscript>, Betaisodona<Superscript>&#174;</Superscript>-Salbe und -L&#246;sung (Mundipharma GmbH, Limburg) sowie Polihexanid (PHMB) in Form von Lavasept<Superscript>&#174;</Superscript> (Fresenius Kabi GmbH, Oberursel) sowie zum Vergleich die zunehmend an Bedeutung zur antiseptischen Wundbehandlung verlierenden Wirkstoffe Chlorhexidindigluconat und Silber-haltige Antiseptika ausgew&#228;hlt.</Pgraph>
      <Pgraph>Adh&#228;rente Zellkulturen mit &#62;80&#37; Konfluenz wurden mit 8 geeigneten Konzentrationen des jeweiligen Wirkstoffs in Zellkulturmedium mit 10&#37; fetalem bovinen Serum (FBS) f&#252;r 30 min bei 37&#176;C exponiert. Als Nachweisverfahren der resultierenden Zytotoxizit&#228;t wurden der MTT- und der Neutralrot (NR)-Test verwendet. Der MTT-Test <TextLink reference="1"></TextLink> basiert darauf, dass die mitochondriale Succinatdehydrogenase, ein Enzym der Atmungskette, das Tetrazoliumsalz MTT zu einem unl&#246;slichen Formazan-Derivat metabolisiert, dass in vitalen Zellen gespeichert wird. Nach Elution des Formazans mittels salzsaurem Propan-2-ol wird der Farbstoffgehalt der exponierten Zellen spektralphotometrisch mit der Medium-Kontrolle verglichen. Beim NR-Test <TextLink reference="2"></TextLink> wird der Vitalfarbstoff NR ausschlie&#223;lich von lebenden Zellen &#252;ber die Zellmembran durch Endozytose (Pinozytose) aufgenommen und in den Lysosomen gespeichert. Nach Elution mit essigsaurem Ethanol werden die Farbstoffgehalte spektralphotometrisch bestimmt und mit der Kontrolle verglichen. </Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Ergebnisse">
      <MainHeadline>Ergebnisse</MainHeadline>
      <Pgraph>Es wurden IC<Subscript>50</Subscript>-Werte, d.h. Konzentrationswerte, bei denen 50&#37; der Pr&#252;fzellen vital bleiben, aus Konzentrations-Zellvitalit&#228;ts-Beziehungen f&#252;r den jeweiligen antiseptischen Wirkstoff abgeleitet, sowohl nach 30 min Kontakt mit den Pr&#252;fzellen als auch nach 30 min Kontakt und anschlie&#223;ender Folgekultur &#252;ber 24 h. </Pgraph>
      <Pgraph>F&#252;r CHO-Zellen resultieren IC<Subscript>50</Subscript>-Werte von 3,35 mg <TextGroup><PlainText>PVP-I</PlainText></TextGroup>&#47;ml in Repithel<Superscript>&#174;</Superscript> sowohl im MTT- als auch im NR-Test nach 30 min Kontaktzeit und von 4,9 mg PVP-I&#47;ml w&#228;hrend der 24 h Folgekultur. Bei den L929-Zellen ist dieser Revitalisierungs-Effekt ebenfalls nachweisbar. Hier resultieren IC<Subscript>50</Subscript>-Werte von 4,6 mg PVP-I&#47;ml (MTT- und NR-Test) nach 30 min Kontaktzeit und von 6,9 mg PVP-I&#47;ml nach 30 min Kontakt und 24 h Folgekultur. &#196;hnliche Ergebnisse resultieren bei PVP-I in Salbe. Die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte betragen unmittelbar nach 30 min Kontakt mit den CHO-Zellen 4,9 mg PVP-I&#47;ml und 8 mg PVP-I&#47;ml nach 30 min Kontakt und 24 h Folgekultur. Der Revitalisierungseffekt ist bei Anwendung der L929-Zellen ebenfalls nachweisbar. Es resultieren IC<Subscript>50</Subscript>-Werte von 6,2 mg PVP-I&#47;ml (MTT- und NR-Test) nach 30 min Kontakt und von 9,5 mg PVP-I&#47;ml nach 30 min Kontakt und 24 h Folgekultur. F&#252;r PVP-I in der L&#246;sung ist der Revitalisierungs-Effekt nur gegen&#252;ber den L929-Zellen nachweisbar. Die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte betragen nach 30 min Kontakt 3,9 mg PVP-I&#47;ml (NR-Test) bzw. 4,2 mg PVP-I&#47;ml (MTT-Test) und 5 mg PVP-I&#47;ml (MTT- und NR-Test) nach 30 min Kontakt und 24 h Folgekultur. Gegen&#252;ber den CHO-Zellen blieben die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte dagegen weitestgehend konstant mit 2,5-2,7 mg PVP-I&#47;ml sowohl nach 30 min Kontakt als auch nach 30 min Kontakt und 24 h Folgekultur.</Pgraph>
      <Pgraph>F&#252;r PHMB ist ein Revitalisierungseffekt nur im NR-Test und bei Konzentrationen unterhalb der IC<Subscript>50</Subscript> nachweisbar. Konzentrationen oberhalb der IC<Subscript>50</Subscript> bewirken im NR- und MTT-Test eine irreversible Sch&#228;digung. Die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte betragen nach 30 min Kontakt mit den CHO-Zellen 38 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 112 &#181;g&#47;ml (MTT-Test) und nach 24 h Folgekultur 55 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 72 &#181;g&#47;ml (MTT-Test). Gegen&#252;ber den L929-Zellen reagiert PHMB &#228;hnlich wie gegen&#252;ber den CHO-Zellen. Die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte betragen nach 30 min Kontakt mit den L929-Zellen 59 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 127 &#181;g&#47;ml (MTT-Test) und nach 24 h Folgekultur 78 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 93 &#181;g&#47;ml (MTT-Test). Gegen&#252;ber beiden Pr&#252;fzellen wird insbesondere im MTT-Test w&#228;hrend der 24 h Nachkultur eine signifikante Zunahme in der Zytotoxizit&#228;t nachgewiesen.</Pgraph>
      <Pgraph>F&#252;r den Wirkstoff OCT wird kein Revitalisierungs-Effekt gegen&#252;ber beiden Pr&#252;fzellen nachgewiesen. Im Gegenteil, sowohl im MTT- als auch NR-Test ist w&#228;hrend der 24 h Folgekultur eine signifikante Zunahme der Zytotoxizit&#228;t nachweisbar. Die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte betragen nach 30 min Kontakt mit den CHO-Zellen 22 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 27 &#181;g&#47;ml (MTT-Test) und nach der 24 h Folgekultur 17 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 18 &#181;g&#47;ml (MTT-Test). F&#252;r die L929-Zellen betragen die IC<Subscript>50</Subscript>-Werte nach 30 min Kontakt 35 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 42 &#181;g&#47;ml (MTT-Test) und nach der 24 h Folgekultur 31 &#181;g&#47;ml (NR-Test) bzw. 27 &#181;g&#47;ml (MTT-Test).</Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Diskussion">
      <MainHeadline>Diskussion</MainHeadline>
      <Pgraph>Aus Untersuchungen zur In-vitro-Zytotoxizit&#228;t unter Anwendung der NR- und MTT-Methode als Nachweisreaktionen k&#246;nnen Absch&#228;tzungen zu prim&#228;ren und nachfolgenden zytotoxischen Wirkungen erfolgen. Der NR-Test erfasst haupts&#228;chlich zytotoxische Reaktionen, die mit einer Ver&#228;nderung an der Zellmembran verbunden sind. Der MTT-Test erfasst dagegen &#196;nderungen der Aktivit&#228;t der mitochondrialen Succinatdehydrogenase, einem intrazellul&#228;ren Enzym; somit werden zytotoxische Reaktionen detektiert, die vornehmlich intrazellul&#228;r stattfinden. Mit dem verwendeten Untersuchungsschema, der Bestimmung der Zytotoxizit&#228;t nach 30 min Kontaktzeit der Pr&#252;fzellen mit dem antiseptischen Wirkstoff und einer nach der 30 min Kontaktzeit folgenden 24 h Kultur der Pr&#252;fzellen mit Entfernen der Wirkstoffe k&#246;nnen teilweise zellul&#228;re Wirk- bzw. Transportmechanismen f&#252;r die jeweilige Substanz aufgedeckt werden. Dabei reagieren die Epithelzellen empfindlicher als die Fibroblasten. </Pgraph>
      <Pgraph>PVP-enthaltende Pr&#228;parate besitzen eine identische IC<Subscript>50</Subscript> im MTT- und NR-Test. Demzufolge wirkt Iod sowohl gegen&#252;ber der Zellmembran als auch intrazellul&#228;r parallel und gleichzeitig zytotoxisch. Die gesch&#228;digten Fibroblasten und Epithelzellen mit &#62;20&#37; Vitalit&#228;t nach 30 min Exposition revitalisieren vollst&#228;ndig innerhalb der 24 h Folgekultur, d.h. die nach 30 min nachgewiesenen zytotoxischen Ver&#228;nderungen werden durch die Zellaktivit&#228;t w&#228;hrend der 24 h Folgekultur aufgehoben. </Pgraph>
      <Pgraph>Der Wirkstoff PHMB reagiert prim&#228;r und nachfolgend unterschiedlich zytototoxisch gegen&#252;ber beiden Pr&#252;fzellen im MTT- und NR-Test. Die gesch&#228;digten Fibroblasten und Epithelzellen mit Erhalt der Vitalit&#228;t &#62;50&#37; nach 30 min Exposition revitalisieren teilweise w&#228;hrend der 24 h Folgekultur ohne Wirkstoffanwesenheit. Konzentrationen mit &#60;50&#37; Zellvitalit&#228;t rufen w&#228;hrend der 24 h Folgekultur eine h&#246;here zytotoxische Reaktion im NR-Test hervor. Im MTT-Test wird die nach 30 min Kontakt mit den Pr&#252;fzellen nachgewiesene zytotoxische Reaktion von PHMB w&#228;hrend der 24 h Folgekultur verst&#228;rkt. PHMB bindet prim&#228;r an Phospholipide der Zellmembran <TextLink reference="3"></TextLink>, was durch den niedrigeren IC<Subscript>50</Subscript>-Wert im NR-Test gegen&#252;ber dem MTT-Test ausgedr&#252;ckt wird. Das Zellmembran-st&#228;ndige PHMB wird dann m&#246;glicherweise intrazellul&#228;r weiter transportiert zu den hochaffinen sauren Phospholipiden (Cardiolipin) der Mitochondrien, was sowohl durch die Zunahme der zytotoxischen Reaktion im MTT-Test als auch durch die teilweise Rivitalisierung bei PHMB-Konzentrationen &#60;IC<Subscript>50</Subscript> im NR-Test nach der 24 h Folgekultur bekr&#228;ftigt wird. </Pgraph>
      <Pgraph>Der Wirkstoff OCT wirkt gegen&#252;ber beiden Pr&#252;fzellen prim&#228;r und nachfolgend gleich zytotoxisch im MTT- und NR-Test. Zell-gebundenes OCT wirkt in beiden Nachweisverfahren w&#228;hrend der 24 h Folgekultur verst&#228;rkt zytotoxisch. Diese Reaktionsfolge wurde ebenfalls f&#252;r die Wirkstoffe Chlorhexidindigluconat (CHX) und silberhaltige Verbindungen, wie z.B. AgNO<Subscript>3</Subscript>, Ag(I)-sulfadiazin und Silberprotein nachgewiesen (Ergebnisse nicht gezeigt). Im Unterschied zu diesen Wirkstoffen bleibt zellgebundenes OCT jedoch gegen&#252;ber Mikroorganismen weiterhin biologisch aktiv <TextLink reference="4"></TextLink>. </Pgraph>
      <Pgraph>Bei der Wertung der Ergebnisse ist zu ber&#252;cksichtigen, dass in einer doppelblinden, randomisierten, stratifizierten, kontrollierten Studie in Parallelgruppen beim Schwein durch Lavasept<Superscript>&#174;</Superscript> die Wundheilung signifikant im Vergleich zu Octenisept<Superscript>&#174;</Superscript>. und Ringer-L&#246;sung (Kontrolle) gef&#246;rdert wurde, wobei sich der Einfluss auf die Wundheilung zwischen Octenisept<Superscript>&#174;</Superscript> und Ringer-L&#246;sung nicht unterschied <TextLink reference="5"></TextLink>. Dieser Unterschied k&#246;nnte in der partiell revitalisierenden Wirkung von Polihexanid begr&#252;ndet sein. Im Unterschied dazu wird die Heilung exp. Wunden bei Nagetierspecies bereits durch 0,75&#37; PVP-Iod und durch 0, 1&#37; Chlorhexidin gehemmt <TextLink reference="6"></TextLink>. Diese PVP-Iod-Konzentration ist fast doppelt so hoch wie die f&#252;r die Zellinien ermittelte IC<Subscript>50</Subscript>, so dass zumindest ohne Nachsp&#252;len in vivo offensichtlich keine Revitalisierung stattfindet. Allerdings bewirkte PVP-Iod an exp. Wunden des Meerschweinchens 2&#37;ig noch eine Wundheilungsf&#246;rderung um 25&#37; und erst durch 5&#37; wurde die Wundheilung im Vergleich zu Ringerl&#246;sung um 43&#37; gehemmt. Insofern ist das beobachtete Ph&#228;nomen der Revitalisierung auch im Bereich mikrobiozid wirksamer Konzentrationen als relevant anzusehen. Als Konsequenz k&#246;nnte abgeleitet werden, dass durch Absp&#252;len mit Ringerl&#246;sung innerhalb 30 min nach Anwendung von PVP-Iod die Wundvertr&#228;glichkeit von PVP-Iod zu verbessern w&#228;re. </Pgraph>
      <Pgraph>In die erhaltenen in vitro-Ergebnisse ordnen sich die tierexperimentellen Ergebnisse zur Wundheilungsf&#246;rderung <TextLink reference="7"></TextLink> und Behandlungsergebnisse mittels Polihexanid behandelter Spalthautnetztransplantate ein. Diese waren durch rasch fortschreitende Reepithelisation gekennzeichnet, w&#228;hrend nach Anwendung von PVP-Iod und Silbernitrat tief reichende Nekrosen und ausgepr&#228;gte Fibrinaustritte beobachtet wurden. In &#220;bereinstimmung dazu epithelisierten mit Polihexanid behandelte Verbrennungswunden 2. Grades ohne weiteres Debridement und ohne klinische Infektionszeichen nach durchschnittlich 10 d bei auff&#228;lliger Schmerzfreiheit. Im Gegensatz zur Anwendung von Silbernitrat konnte kein Fibrinfilm auf der Wunde beobachtet werden. Als Schlussfolgerung wird aus dieser klinischen Anwendungsstudie abgeleitet, dass f&#252;r Verbrennungswunden 2. Grades, die nicht prim&#228;r plastisch-chirurgisch gedeckt werden k&#246;nnen, der Wirkstoff Polihexanid zur Wundantiseptik geeignet ist, weil er trotz antiseptischer Wirksamkeit nicht die Reepithelisierung behindert <TextLink reference="8"></TextLink>. </Pgraph>
    </TextBlock>
    <TextBlock linked="yes" name="Fazit">
      <MainHeadline>Fazit</MainHeadline>
      <Pgraph>Die zytotoxischen Reaktionen von PVP-I-haltigen Pr&#228;paraten sind in einem definierten Konzentrationsbereich (&#62;20&#37; Zellvitalit&#228;t) reversibel. </Pgraph>
      <Pgraph>Die zytotoxische Wirkung von PHMB ist nur f&#252;r die Zellmembran-Zytotoxizit&#228;t bei Konzentrationen unterhalb der IC<Subscript>50</Subscript>, d.h. Zellvitalit&#228;t &#62;50&#37;, teilweise reversibel. Eine vollst&#228;ndige Revitalisierung ist jedoch nicht m&#246;glich, da gleichzeitig die intrazellul&#228;re zytotoxische Wirkung von PHMB zunimmt. Bedingt wird die Zunahme der Zytotoxizit&#228;t nach 24 h Folgekultur durch einen m&#246;glichen Transport von PHMB von der Zellmembran zu den Mitochondrien, wobei das anionische Phospholipid Cardiolipin eine entscheidende Rolle spielt.</Pgraph>
      <Pgraph>Die zytotoxische Wirkung von sowohl OCT als auch CHX und silberhaltigen Pr&#228;paraten ist irreversibel. Der von den Zellen gebundene Wirkstoff bleibt gebunden und verst&#228;rkt w&#228;hrend der 24 h Folgekultur seine zytotoxische Wirkung. Zellgebundenes OCT besitzt jedoch gegen&#252;ber zellgebundenem CHX den Vorteil, dass es biologisch auch gegen&#252;ber Mikrorganismen aktiv bleibt. Die losgel&#246;ste Betrachtung nur der zytotoxischen Wirkung eines antiseptischen Wirkstoffs kann demzufolge zu einer irref&#252;hrenden Aussage f&#252;hren. Eine Absch&#228;tzung der Eignung eines antiseptischen Wirkstoffs f&#252;r die jeweilige klinische Fragestellung ist deshalb nur durch gleichzeitige Betrachtung von mikrobiozider und zytotoxischer Wirkung sinnvoll, wie es mit dem Biokompatibilit&#228;sindex m&#246;glich ist <TextLink reference="9"></TextLink>.</Pgraph>
    </TextBlock>
    <References linked="yes">
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        <RefAuthor>Mosmann T</RefAuthor>
        <RefTitle>Rapid colorimetric assay for growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays</RefTitle>
        <RefYear>1983</RefYear>
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        <RefPage>55-63</RefPage>
        <RefTotal>Mosmann T. Rapid colorimetric assay for growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Meth. 1983;65(1-2):55-63</RefTotal>
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