Mikrobiozide Wirksamkeit antiseptischer Mundspüllösungen auf Basis von Octenidin, Chlorhexidin bzw. Amin-/Zinnfluorid gegenüber Parodontitis-Erregern

dgkh000081 Originalarbeit Mikrobiozide Wirksamkeit antiseptischer Mundspüllösungen auf Basis von Octenidin, Chlorhexidin bzw. Amin-/Zinnfluorid gegenüber Parodontitis-Erregern Microbicidal efficacy of antiseptic mouth rinses on the basis of Octenidine, Chlorhexidine or amine-/tin-fluoride on periodontal pathogens Mutters Mutters Reinier R Prof. Dr.

Institut für Medizinische Mikrobiologie und Krankenhaushygiene, Hans-Meerwein-Straße 2, 35043 Marburg, DeutschlandInstitut für Medizinische Mikrobiologie und Krankenhaushygiene, Marburg, Deutschland

Mutters@staff.uni-marburg.de author Bykow Bykow Helene H

author Kulhat Kulhat Majid M

author German Medical Science

Düsseldorf, Köln

610 periodontitis mouth rinse Parodontitis Mundspüllösung 20071228 germ 1863-5245 2 2 GMS Krankenhaushygiene Interdisziplinär GMS Krankenhaushyg Interdiszip Die infizierte Problemwunde 2007 - The infected problem wound 2007 48 Antiseptische Mundspüllösungen haben sich zur Prävention oraler Infektionen und von Pneumonien als geeignet erwiesen. Über die mikrobiozide Wirksamkeit solcher Lösungen gegenüber den einzelnen relevanten Erregern gibt es aber kaum Daten. In der vorliegenden Studie sollte daher die Wirksamkeit der kommerziell erhältlichen Spüllösungen Octenisept®, Octenidol®, Chlorhexamed® und Meridol® gegenüber verschiedenen anaeroben und mikroaerophilen Erregern im quantitativen Suspensionstest untersucht werden. Im Ergebnis zeigte sich, dass Octenidin-basierte Spüllösungen eine hohe Reduktionsrate gegen die geprüften Erreger aufwiesen und somit möglicherweise zur Prävention von oralen Infektionen und Pneumonien geeignet sind. Auch Chlorhexidindigluconat-haltige und Amin-/Zinnfluorid-haltige Lösungen erreichten bei den meisten geprüften Erregern gute Reduktionsfaktoren. Bei einigen Erregergruppen, wie den mikroaerophilen gramnegativen Stäbchenbakterien und anaeroben grampositiven Kokkenbakterien waren jedoch geringere Reduktionen erzielbar. Meridol wies eine Lücke bei A. actinomycetemcomitans auf. The use of antiseptic mouth rinses could be an useful clinical adjunct for reducing the risk of oral infections in dentistry and in intensive care medicine for prevention of pneumonia. Unfortunately no information is available on the microbicidal efficacy of the agents on peridondotal pathogens. The aim of the study was to proof the effect of the commercial available solutions Octenisept®, Octenidol®, Chlorhexamed® and Meridol® against different anaerobic and microaerophilic oral pathogens. As a result it could be shown, that octenidine-based rinses exhibit high in vitro reduction rates of the testorganisms, as consequence there are possibly suitable to prevent oral infections and can serve as an adjuncant in the prevention of pneumonia. The results also show that chlorhexidine digluconate and amine-/tin-fluoride outgoing from the in vitro data are appropriate to decrease the oral bacterial loading. With some pathogens, as microaerophilic rods and anaerobic grampositive cocci only minor reduction rates could be observed. Especially, Meridol proved to be rather ineffective in the case of A. actinomycetemcomitans. Einleitung Erkrankungen des menschlichen Parodonts unterscheiden sich von anderen Infektionen wesentlich dadurch, dass sie nicht von einem einzigen Erreger verursacht werden, sondern polymikrobielle Infektionen darstellen. Von den mehr als 500 unterschiedlichen Bakterienspezies der menschlichen Mundhöhle ist allerdings nur ein begrenzter Teil ursächlich an diesen Infektionen beteiligt , . Viele der unterschiedenen Gruppen kommen allerdings in sehr geringer Zahl vor, so dass nur die 30 bis 50 quantitativ überwiegenden Arten dieses „Konsortiums“ als primär relevant in der Ätiologie von Parodontalerkrankungen gelten . Hier zählen die mikroaerophilen bzw. anaeroben Spezies Aggregatibacter (ehemals Actinobacillus) actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis und Prevotella intermedia als die wesentlichen Leitkeime dieser destruktiven Erkrankungen , ; hinzu kommen Prevotella nigrescens, Bacteroides forsythus, Fusobacterium nucleatum, Campylobacter rectus, Eikenella corrodens, Treponema denticola, Parvimonas micros (ehemals Peptostreptococcus micros), Dialister spp. und andere Arten. Die durch diese Erreger verursachten meist chronischen Infektionen in Form einer Gingivitis und Parodontitis führen zu hohen volkswirtschaftlichen Belastungen. Neben den direkten Behandlungskosten müssen weitere Kosten für die Therapie fortgeleiteter oder systemischer Infektionen (Mediastinitis, Organabszess, Osteomyelitis, Arteriosklerose, koronare Herzerkrankungen), sowie den damit einhergehenden Arbeitsausfall bis hin zur Invalidität berücksichtigt werden . Gingivitis und Parodontitis gehören zu den häufigsten Erkrankungen der modernen Zivilisationsgesellschaft. Es konnte gezeigt werden, dass nach dem 40. Lebensjahr Erkrankungen des Parodonts für mehr als 60% der durchgeführten zahnärztlichen Extraktionen verantwortlich sind . Die von Flores de Jacoby durchgeführte Studie bei 12-14 jährigen Jugendlichen ergab eine Gingivitisrate von 100%. Von diesen waren 45% an Parodontitis erkrankt . Die Behandlung dieser Infektionen erfordert heute immer noch die chirurgische Intervention, gekoppelt mit einer Antibiotikatherapie. Diese stützt sich im Wesentlichen auf Beta-Lactamase-Inhibitorkombinationen, wie Amoxicillin-Clavulansäure oder Chinolone (Ciprofloxacin). Neuere Arbeiten zeigen eine gute Wirkung von modernen Chinolonen der Gruppe 4, wie Moxifloxacin , , . Die Therapiemaßnahmen werden vor Sanierungsmaßnahmen und insbesondere im Anschluss an diese über lange Zeit durch Spülungen mit antiseptischen Lösungen unterstützt. Zur Anwendung kommen Lösungen mit Amin-/Zinnfluorid</PlainText></TextGroup>, Chlorhexidindigluconat oder Octenidin. Deren Wirkung auf die „Leitkeime“, die mutmaßlich hauptverantwortlichen Erreger dieser Infektionen, sollte daher untersucht werden.</Pgraph> </TextBlock> <TextBlock linked="yes" name="Material und Methoden"> <MainHeadline>Material und Methoden</MainHeadline> <Pgraph>Kommerziell erhältliche Produkte, die sich für die antiseptische Mundspülung eignen, wurden auf ihre antimikrobielle Wirkung gegenüber den gramnegativen, mikroaerophilen Spezies <Mark2>Aggregatibacter actinomycetemcomitans</Mark2> (ATCC 43717), <Mark2>Campylobacter rectus</Mark2> (MCCM 02085), <Mark2>Capnocytophaga</Mark2> sp. (MCCM 00765), <Mark2>Eikenella corrodens</Mark2> (MCCM 03078), den gramnegativen Anaerobiern <Mark2>Fuso</Mark2><Mark2></Mark2><Mark2>bacterium nucleatum</Mark2> (MCCM 00991), <Mark2>Porphyromonas gingivalis</Mark2> (MCCM 03199), <Mark2>Prevotella buccalis</Mark2> (MCCM 00507), <Mark2>Dialister pneumosintes</Mark2> (DSM 11619) und gegenüber den grampositiven <Mark2>Actinomyces odontolyticus</Mark2> (ATCC 17982) und <Mark2>Parvimonas micros</Mark2> (MCCM 02766) untersucht. Verwendet wurden Octenisept (2%), Octenidol (0,1%), Chlorhexamed (0,1%) und Meridol-Mundspüllösung (<TextGroup><PlainText>Amin-/Zinnfluorid)</PlainText></TextGroup>.</Pgraph> <Pgraph>Die zu prüfenden Stämme wurden primär in Brain-Heart-Bouillon und Columbia-Blutagar unter anaeroben Bedingungen für 72 h bei 37°C angezüchtet. Die mikroaerophilen <Mark2>Capnocytophaga</Mark2> sp. und <Mark2>Aggregatibacter actinomycetemcomitans</Mark2> wurden in Brain-Heart-Bouillon und auf Columbia-Blutagar unter einer CO<Subscript>2</Subscript>-haltigen Kultur-Atmosphäre für 48 h bei 37°C angezüchtet.</Pgraph> <Pgraph>Wachstumskontrollen erfolgten in Thioglykolat-Medium, versetzt mit 0,1% Vitamin K1 und 0,5% Hämin, sowie auf Columbia-Blutagar unter gleichen Bedingungen wie bei der primären Anzucht.</Pgraph> <Pgraph>Die in den quantitativen Suspensionsversuchen verwendeten Bakteriestämme und deren eingesetzte Anzahl Koloniebildender Einheiten (KbE) sind in Tabelle 1 <ImgLink imgNo="1" imgType="table"/> dargestellt.</Pgraph> <Pgraph>Die Lösungen der Testorganismen wurden in steriler, mechanisch entgaster und mit N<Subscript>2</Subscript> versetzter Ringerlösung angesetzt. Die Wachstumskontrollen und Keimzahlbestimmungen nach durchgeführter Testung erfolgten in Thioglykolat-Medium mit Zusatz von 0,1% Vitamin K1 und 0,5% Hämin sowie auf Columbia-Blutagar unter anaeroben resp. mikroaerophilen Bedingungen und Bebrütung bei 37°C für 48-72h.</Pgraph> <Pgraph>450 µl der Prüflösungen wurden in sterile Reaktionsgefäße gefüllt. Diese wurden mit 50 µl der Testorganismensuspension versetzt und nach einer Einwirkzeit von 30 s die Reaktion mit 50 µl des Neutralisationsmittels (TCL: Tween 80 30 g/l, Lecithin 3 g/l, L-Cystein 1 g/l, A. bidest. ad 1000 ml) mit einer Einwirkzeit von 1 min inaktiviert. Nach jeder Manipulation wurden die Prüflösungen in den Reaktionsgefäßen sorgfältig mit N<Subscript>2</Subscript> überschichtet, um das Absterben der heiklen Anaerobier durch Anwesenheit von O<Subscript>2</Subscript> zu verhindern.</Pgraph> </TextBlock> <TextBlock linked="yes" name="Ergebnisse"> <MainHeadline>Ergebnisse</MainHeadline> <Pgraph>Um Fehler aufgrund des natürlichen Absterbens der schwierig zu kultivierenden Erreger beim Transfer vom Reaktionsgefäß in die Kontrollmedien zu vermeiden, wurden die Reduktionsraten in üblicher Weise in Bezug auf die Daten der Kontrollkulturen ermittelt und nicht mit den Werten der primären Einsaaten verglichen. </Pgraph> <Pgraph>Die Octenidin-basierten antiseptischen Lösungen waren hoch effektiv. Für Octenisept wurden Keimzahlreduktionen zwischen 8,11 und 6,84 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen ermittelt. Die Prüfung von Octenidol ergab bei sieben Stämmen Reduktionen von 8,08 bis 6,54 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen, für die mikroaerophile, gramnegative <Mark2>Eikenella corrodens</Mark2> und den grampositiven Anaerobier <Mark2>Parvimonas micros</Mark2> wurden niedrigere log<Subscript>10</Subscript>-Stufen Reduktionen von 4,11 und 3,65 gefunden. Die ermittelten Reduktionsraten für Chlorhexamed lagen bei 7 Teststämmen zwischen 8,08 und 6,84, also auf vergleichbarem Niveau wie für Octenisept. Für die beiden mikroaerophilen Arten <Mark2>E. corrodens</Mark2> und <Mark2>Capnocytophaga</Mark2> sp. wurde jedoch nur eine Reduktion um 2,30 bzw. 3,11 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen gefunden. <Mark2>P. micros</Mark2> erwies sich als relativ unempfindlich gegenüber Chlorhexamed mit einer Reduktionsrate von 1,12 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen. Die mit Meridol erreichbare Keimreduktion bewegte sich zwischen 8,11 und 7,05 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen. Die Koloniezahl von <Mark2>A. actinomycetemcomitans</Mark2> wurde nur um 2,37 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen reduziert, die von <Mark2>P. micros</Mark2> um 4,60 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen (Tabelle 2 <ImgLink imgNo="2" imgType="table"/>). </Pgraph> </TextBlock> <TextBlock linked="yes" name="Diskussion"> <MainHeadline>Diskussion</MainHeadline> <Pgraph>Die Anwendung von Mundspüllösungen ist in der Zahnmedizin zur Reduktion und Prävention von Infektionen durch orale Mikroorganismen und zur unterstützenden Heilbehandlung nach Zahnbehandlungen etabliert. Sie werden aber auch zur Reduktion von Pneumonien in der Intensivmedizin erfolgreich angewendet. Die 2- bis 3mal tägliche Spülung der Mundhöhle von Intensivpatienten ist kostengünstig, bei jedem intubierten Patienten anwendbar und senkt das Risiko für eine nosokomiale Pneumonie unter Beatmung <TextLink reference="14"></TextLink>, <TextLink reference="15"></TextLink>. Da neben klinischen Studien keine Daten erhältlich sind, die eine Aussage zur mikrobioziden Wirksamkeit der Agenzien auf Mikroorganismen der Mundhöhle, speziell auf Erreger von chronischen Infektionen des Parodonts machen, sollte in der vorliegenden Studie dieser Frage nachgegangen werden. Im Ergebnis zeigte sich, dass Lösungen mit Octenidin als Wirkstoffkomponente eine <Mark2>in vitro</Mark2> sehr gute Wirkung gegenüber den geprüften Erregern aufweisen. Sowohl Octenisept als auch die neu eingeführte Octenidol-Lösung erreichten hohe Reduktionsraten. Da die natürliche Bakterienlast bei einer Parodontitis-Infektion meist in einem Bereich von 10<Superscript>3</Superscript> KbE/ml bis 10<Superscript>6</Superscript> KbE/ml je Spezies liegt, sollten die hier gemessenen Reduktionsraten klinische Erfolge zeitigen können. Auf der Basis der ermittelten Reduktionszahlen sollte das auch bei Anwendung von Chlorhexidin-basierten Produkten möglich sein, solange keine mikroaerophilen Spezies, wie die hier geprüften <Mark2>Capnocytophaga</Mark2> und <Mark2>Eikenella</Mark2> oder die anaerobe grampositive Spezies <Mark2>Parvimonas micros</Mark2> am Infektionsgeschehen beteiligt sind. Für diese wurden nur niedrige Reduktionsraten festgestellt, so dass eine Infektionsprävention oder -therapie mit diesem Wirkstoff durch weitere Maßnahmen ergänzt werden muss. Allerdings ist bei der Entscheidung Octenidin vs. Chlorhexidin auch das toxikologische Profil zu berücksichtigen, das eindeutig zugunsten von Octenidin ausfällt <TextLink reference="16"></TextLink>, <TextLink reference="17"></TextLink>. Abgesehen von Infektionen mit Beteiligung von <Mark2>A. actinomycetemcomitans</Mark2>, für den lediglich 2 log<Subscript>10</Subscript>-Stufen Reduktionen nachweisbar waren, erscheint auch die Anwendung von Meridol, einer <TextGroup><PlainText>Amin-/Zinnfluorid-haltigen</PlainText></TextGroup> Mundspüllösung, geeignet. </Pgraph> </TextBlock> <References linked="yes"> <Reference refNo="14"> <RefAuthor>DeRiso AJ</RefAuthor> <RefAuthor>Ladowski</RefAuthor> <RefAuthor>JS</RefAuthor> <RefAuthor>Dillon TA</RefAuthor> <RefAuthor>Justice JW</RefAuthor> <RefAuthor>Peterson AC</RefAuthor> <RefTitle>Chlorhexidine gluconate 0.12% oral rinse reduces the incidence of total nosocomial respiratory infection and nonprophylactic systemic antibiotic use in patients undergoing heart surgery</RefTitle> <RefYear>1996</RefYear> <RefJournal>Chest</RefJournal> <RefPage>1556-61</RefPage> <RefTotal>DeRiso AJ, Ladowski,JS, Dillon TA, Justice JW, Peterson AC. Chlorhexidine gluconate 0.12% oral rinse reduces the incidence of total nosocomial respiratory infection and nonprophylactic systemic antibiotic use in patients undergoing heart surgery. Chest. 1996;109(6):1556-61.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="11"> <RefAuthor>Eick S</RefAuthor> <RefAuthor>Güntsch A</RefAuthor> <RefAuthor>Jentsch H</RefAuthor> <RefAuthor>Hoffmann T</RefAuthor> <RefAuthor>Pfister W</RefAuthor> <RefTitle>Anwendung von Moxifloxacin bei der Behandlung von Patienten mit Parodontitis - Wirkung auf die Mikroflora</RefTitle> <RefYear>2007</RefYear> <RefJournal>Infection</RefJournal> <RefPage>59-60</RefPage> <RefTotal>Eick S, Güntsch A, Jentsch H, Hoffmann T, Pfister W. Anwendung von Moxifloxacin bei der Behandlung von Patienten mit Parodontitis - Wirkung auf die Mikroflora. Infection. 2007;35 (Suppl. I):59-60.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="9"> <RefAuthor>Flores-de-Jacoby L</RefAuthor> <RefTitle>Epidemiology of periodontal diseases in West Germany</RefTitle> <RefYear>1987</RefYear> <RefJournal>J Restaur Zahnmed</RefJournal> <RefPage>211-2</RefPage> <RefTotal>Flores-de-Jacoby L. Epidemiology of periodontal diseases in West Germany. J Restaur Zahnmed. 1987;4(4):211-2.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="8"> <RefAuthor>Johansen SB</RefAuthor> <RefAuthor>Johansen JR</RefAuthor> <RefTitle>A survey of causes of permanent tooth extractions in South Australia</RefTitle> <RefYear>1977</RefYear> <RefJournal>Aust Dent J</RefJournal> <RefPage>238-42</RefPage> <RefTotal>Johansen SB, Johansen JR. A survey of causes of permanent tooth extractions in South Australia. Aust Dent J. 1977;22(4):238-42.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="15"> <RefAuthor>Koeman M</RefAuthor> <RefAuthor>van der Ven AJ</RefAuthor> <RefAuthor>Hak E</RefAuthor> <RefAuthor>Joore HC</RefAuthor> <RefAuthor>Kaasjager K</RefAuthor> <RefAuthor>de Smet AG</RefAuthor> <RefAuthor>Ramsay G</RefAuthor> <RefAuthor>Dormans TP</RefAuthor> <RefAuthor>Aarts LP</RefAuthor> <RefAuthor>de Bel EE</RefAuthor> <RefAuthor>Hustinx WN</RefAuthor> <RefAuthor>van der Tweel I</RefAuthor> <RefAuthor>Hoepelman AM</RefAuthor> <RefAuthor>Bonten MJ</RefAuthor> <RefTitle>Oral decontamination with chlorhexidine reduces the incidence of ventilator-associated pneumonia</RefTitle> <RefYear>2006</RefYear> <RefJournal>Am J Respir Crit Care Med</RefJournal> <RefPage>1348-55</RefPage> <RefTotal>Koeman M, van der Ven AJ, Hak E, Joore HC, Kaasjager K, de Smet AG, Ramsay G, Dormans TP, Aarts LP, de Bel EE, Hustinx WN, van der Tweel I, Hoepelman AM, Bonten MJ. Oral decontamination with chlorhexidine reduces the incidence of ventilator-associated pneumonia. Am J Respir Crit Care Med. 2006;173(12):1348-55.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="10"> <RefAuthor>Lange DE</RefAuthor> <RefTitle>Microbiological aspects of periodontal diseases</RefTitle> <RefYear>1984</RefYear> <RefJournal>Zahnärztl Mitt</RefJournal> <RefPage>2420-7</RefPage> <RefTotal>Lange DE. Microbiological aspects of periodontal diseases. Zahnärztl Mitt. 1984;74(21):2420-7.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="4"> <RefAuthor>Listgarten MA</RefAuthor> <RefAuthor>Helldan L</RefAuthor> <RefTitle>Relative distribution of bacteria at clinically healthy and periodontally diseased sites in humans</RefTitle> <RefYear>1978</RefYear> <RefJournal>J Clin Periodontol</RefJournal> <RefPage>115-32</RefPage> <RefTotal>Listgarten MA , Helldan L. Relative distribution of bacteria at clinically healthy and periodontally diseased sites in humans. J Clin Periodontol 1978;5(2):115-32.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="12"> <RefAuthor>Mutters R</RefAuthor> <RefAuthor>Nonnenmacher C</RefAuthor> <RefTitle>Empfindlichkeit grampositiver und gramnegativer sporenloser Anaerobier/Mikroaerophiler gegenüber Moxifloxacin und ausgewählten Anaerobier-wirksamen Antibiotika</RefTitle> <RefYear>2003</RefYear> <RefJournal>Dt Zahnärztl Zeitschr</RefJournal> <RefPage>302-3</RefPage> <RefTotal>Mutters R, Nonnenmacher C. Empfindlichkeit grampositiver und gramnegativer sporenloser Anaerobier/Mikroaerophiler gegenüber Moxifloxacin und ausgewählten Anaerobier-wirksamen Antibiotika. Dt Zahnärztl Zeitschr. 2003;58:302-3.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="7"> <RefAuthor>Nonnenmacher C</RefAuthor> <RefAuthor>Stelzel M</RefAuthor> <RefAuthor>Susin C</RefAuthor> <RefAuthor>Sattler AM</RefAuthor> <RefAuthor>Schaefer JR</RefAuthor> <RefAuthor>Maisch B</RefAuthor> <RefAuthor>Mutters R</RefAuthor> <RefAuthor>Flores-de-Jacoby L</RefAuthor> <RefTitle>Periodontal microbiota in patients with coronary artery disease measured by real-time polymerase chain reaction: a case-control study</RefTitle> <RefYear>2007</RefYear> <RefJournal>J Periodontol</RefJournal> <RefPage>1724-30</RefPage> <RefTotal>Nonnenmacher C, Stelzel M, Susin C, Sattler AM, Schaefer JR, Maisch B, Mutters R, Flores-de-Jacoby L. Periodontal microbiota in patients with coronary artery disease measured by real-time polymerase chain reaction: a case-control study. J Periodontol. 2007;78(9):1724-30.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="1"> <RefAuthor>Paster BJ</RefAuthor> <RefAuthor>Boches SK</RefAuthor> <RefAuthor>Galvin JL</RefAuthor> <RefAuthor>Ericson RE</RefAuthor> <RefAuthor>Lau CN</RefAuthor> <RefAuthor>Levanos VA</RefAuthor> <RefAuthor>Sahasrabudhe A</RefAuthor> <RefAuthor>Dewhirst FE</RefAuthor> <RefTitle>Bacterial diversity in human subgingival plaque</RefTitle> <RefYear>2001</RefYear> <RefJournal>J Bacteriol</RefJournal> <RefPage>3770-83</RefPage> <RefTotal>Paster BJ, Boches SK, Galvin JL, Ericson RE, Lau CN, Levanos VA, Sahasrabudhe A, Dewhirst FE. Bacterial diversity in human subgingival plaque. J Bacteriol. 2001;183:3770-83.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="13"> <RefAuthor>Pfister W</RefAuthor> <RefAuthor>Güntsch A</RefAuthor> <RefAuthor>Jentsch H</RefAuthor> <RefAuthor>Hoffmann T</RefAuthor> <RefAuthor>Eick S</RefAuthor> <RefTitle>Anwendung von Moxifloxacin bei der Behandlung von Patienten mit Parodontitis - Wirkung auf klinische Daten und Entzündungsparameter</RefTitle> <RefYear>2007</RefYear> <RefJournal>Infection</RefJournal> <RefPage>60-1</RefPage> <RefTotal>Pfister W, Güntsch A, Jentsch H, Hoffmann T, Eick S. Anwendung von Moxifloxacin bei der Behandlung von Patienten mit Parodontitis - Wirkung auf klinische Daten und Entzündungsparameter. Infection. 2007;35 (Suppl. I):60-1.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="5"> <RefAuthor>Santangelo R</RefAuthor> <RefAuthor>D'Ercole S</RefAuthor> <RefAuthor>Graffeo R</RefAuthor> <RefAuthor>Marchetti S</RefAuthor> <RefAuthor>Deli G</RefAuthor> <RefAuthor>Nacci A</RefAuthor> <RefAuthor>Piccolomini R</RefAuthor> <RefAuthor>Cattani P</RefAuthor> <RefAuthor>Fadda G</RefAuthor> <RefTitle>Bacterial and viral DNA in periodontal disease: a study using multiplex PCR</RefTitle> <RefYear>2004</RefYear> <RefJournal>New Microbiol</RefJournal> <RefPage>133-7</RefPage> <RefTotal>Santangelo R, D'Ercole S, Graffeo R, Marchetti S, Deli G, Nacci A, Piccolomini R, Cattani P, Fadda G. Bacterial and viral DNA in periodontal disease: a study using multiplex PCR. New Microbiol. 2004;27(2):133-7.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="6"> <RefAuthor>Slots J</RefAuthor> <RefAuthor>Ting M</RefAuthor> <RefTitle>Actinobacillus actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis in human periodontal disease: occurrence and treatment</RefTitle> <RefYear>2000</RefYear> <RefJournal>Periodontol</RefJournal> <RefPage>82-121</RefPage> <RefTotal>Slots J, Ting M. Actinobacillus actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis in human periodontal disease: occurrence and treatment. Periodontol. 2000;20:82-121.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="2"> <RefAuthor>Socransky SS</RefAuthor> <RefAuthor>Haffajee AD</RefAuthor> <RefAuthor>Cugini MA</RefAuthor> <RefAuthor>Smith C</RefAuthor> <RefAuthor>Kent Jr</RefAuthor> <RefTitle>RL. Microbial complexes in subgingival plaque</RefTitle> <RefYear>1998</RefYear> <RefJournal>J Clin Periodontol</RefJournal> <RefPage>134-44</RefPage> <RefTotal>Socransky SS, Haffajee AD, Cugini MA, Smith C, Kent Jr. RL. Microbial complexes in subgingival plaque. J Clin Periodontol. 1998;25:134-44.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="3"> <RefAuthor>Socransky SS</RefAuthor> <RefAuthor>Haffajee AD</RefAuthor> <RefAuthor>Ximenez-Fyvie LA</RefAuthor> <RefAuthor>Feres M</RefAuthor> <RefAuthor>Mager D</RefAuthor> <RefTitle>Ecological considerations in the treatment of Actinobacillus actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis periodontal infections</RefTitle> <RefYear>2000</RefYear> <RefJournal>Periodontol</RefJournal> <RefPage>341-62</RefPage> <RefTotal>Socransky SS, Haffajee AD, Ximenez-Fyvie LA, Feres M, Mager D. Ecological considerations in the treatment of Actinobacillus actinomycetemcomitans and Porphyromonas gingivalis periodontal infections. Periodontol. 2000;20:341-62.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="16"> <RefAuthor>Kramer A</RefAuthor> <RefAuthor>Müller G</RefAuthor> <RefTitle>Octenidindihydrochlorid</RefTitle> <RefYear></RefYear> <RefBookTitle>Wallhäußers Praxis der Sterilisation, Desinfektion, Antiseptik und Konservierung</RefBookTitle> <RefPage></RefPage> <RefTotal>Kramer A, Müller G. Octenidindihydrochlorid. In: Kramer A, Assadian O, Hrsg. Wallhäußers Praxis der Sterilisation, Desinfektion, Antiseptik und Konservierung. Stuttgart: Thieme; im Druck.</RefTotal> </Reference> <Reference refNo="17"> <RefAuthor>Kramer A</RefAuthor> <RefAuthor>Reichwagen S</RefAuthor> <RefAuthor>Widulle H</RefAuthor> <RefAuthor>Heldt P</RefAuthor> <RefTitle>Chlorhexidindiacetat, Chlorhexidindihydrochlorid, Chlorhexidindigluconat</RefTitle> <RefYear></RefYear> <RefBookTitle>Wallhäußers Praxis der Sterilisation, Desinfektion, Antiseptik und Konservierung</RefBookTitle> <RefPage></RefPage> <RefTotal>Kramer A, Reichwagen S, Widulle H, Heldt P. Chlorhexidindiacetat, Chlorhexidindihydrochlorid, Chlorhexidindigluconat. In: Kramer A, Assadian O, Hrsg. Wallhäußers Praxis der Sterilisation, Desinfektion, Antiseptik und Konservierung. Stuttgart: Thieme; im Druck.</RefTotal> </Reference> </References> <Media> <Tables> <Table format="png"> <MediaNo>1</MediaNo> <MediaID>1</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Tabelle 1: Testorganismen und Anwendungskonzentrationen</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Table> <Table format="png"> <MediaNo>2</MediaNo> <MediaID>2</MediaID> <Caption> <Pgraph> <Mark1>Tabelle 2: Reduktionsraten (log</Mark1> <Mark1> <Subscript>10</Subscript> </Mark1> <Mark1>) der Testorganismen</Mark1> </Pgraph> </Caption> </Table> <NoOfTables>2</NoOfTables> </Tables> <Figures> <NoOfPictures>0</NoOfPictures> </Figures> <InlineFigures> <NoOfPictures>0</NoOfPictures> </InlineFigures> <Attachments> <NoOfAttachments>0</NoOfAttachments> </Attachments> </Media> </OrigData> </GmsArticle>